IV. Fett- und Wachsdrogen.

Die Beziehungen der Fette zu den Kohlehydraten sind oben (S. 5) erörtert. Es darf als erwiesen betrachtet werden (VALLÉE, ANDRÉ, GERBER), daß in der Pflanze Mono- und Polysaccharide in Fette übergehen. Ebenso findet der umgekehrte Vorgang statt. Physiologisch spielen die Fette bei den Pflanzen die Rolle von Reservestoffen wenigstens überall da, wo sie, wie in den Früchten und Samen, in größerer Menge auftreten (das Fruchtfleisch der Ölpalme enthält 65–72%, Leinsamen 35–42%, Ricinussamen 46–53%, Mandeln c. 53%, Wallnußsamen 64%, Copra 67% Fett — auch die Knollen von Cyperus esculentus enthalten 28% Fett, sonst sind Rhizome fettarm). Sie werden bei der Keimung verbraucht. Und diese Fälle sind es denn auch, bei denen allein ihre technische Gewinnung lohnt. Ebenso ist das Fett der Sporen Reservestoff (vgl. Lycopodium).

Bei den Tieren finden sich die Fette im sog. Fettgewebe, das besonders im intermuskulären und subkutanen Bindegewebe, im Mesenterium und im Knochenmark auftritt. Aber auch außerhalb des Fettgewebes können die Fette in allen Zellen des Tierkörpers abgelagert werden und finden sich auch in tierischen Sekreten, wie z. B. der Milch.

Im weiteren Sinne gehören auch die Wachsdrogen zu den Fettdrogen und sie sollen denn auch diesen hier angeschlossen werden.

Bei beiden handelt es sich um aliphatische Ester, deren Bestandteile azyklisch sind, nur in der Cholesteringruppe begegnen wir zyklischen Verbindungen.

Die Fette und Wachse setzen sich also aus Säuren und Alkoholen zusammen.

Die Säurehälfte gehört zu folgenden Fettsäurereihen (ich folge der Einteilung von LEWKOWITSCH):

I. Säuren der Essigsäurereihe: CnH2n+2O2. Die niederen Säuren dieser Reihe (Buttersäure, Baldriansäure, Capronsäure, Caprylsäure, Caprinsäure) sind flüchtig, auch noch die Laurinsäure ist mit Wasserdämpfen flüchtig, aber schon die Myristicinsäure erst bei Anwendung von gespanntem Dampf, — das erklärt ihr Auftreten in vielen sog. ätherischen Ölen —, die höheren Fettsäuren der Reihe (Palmitinsäure, Stearinsäure, Arachinsäure, Behensäure, Carnaubasäure, Cerotinsäure, Melissinsäure) auch mit diesem nicht.

Die homologe Reihe der gesättigten Fettsäuren enthält folgende Glieder:

HCOOH Ameisensäure flüchtige, riechende Fettsäuren unter 31°C flüssig

CH3COOH Essigsäure

C2H5COOH Propionsäure

C3H7COOH Buttersäure

C4H9COOH Baldriansäure

C5H11COOH Capronsäure

C6H13COOH Önanthsäure

C7H15COOH Caprylsäure

C8H17COOH Pelargonsäure

C9H19COOH Caprinsäure

C10H21COOH Undecylsäure

C11H23COOH Laurinsäure F = 43,6°

C12H25COOH Ficocerylsäure F = 57°

C13H27COOH Myristinsäure F = 53,8°

C14H29COOH Isocetinsäure (?) F = 55°

C15H31COOH Palmitinsäure F = 62°

C16H33COOH Daturinsäure F = 54,5° (57°)

C17H35COOH Stearinsäure F = 69,3°

[C18H37COOH Nondecylsäure F = 66,5°]

C19H39COOH Arachinsäure F = 77°

[C20H41COOH]

C21H43COOH Behensäure F = 83–84°

[C22H45COOH]

C23H47COOH Lignocerinsäure F = 80,5°

Isomer damit: Carnaubasäure F = 72,5° und

Pisangcerylsäure F = 71°

C24H49COOH Hyänasäure F = 77–78°

C25H51COOH Cerotinsäure F = 78,5° Wachssäuren

[C26H53COOH]

C27H55COOH Geocerinsäure F = 82°

[C28H57COOH]

C29H59COOH Melissinsäure F = 88,5°

C32H65COOH Psyllostearylsäure F = 94–95°

Margarinsäure ist ein Gemisch (von konstantem Schmelzpunkt) von Palmitin- u. Stearinsäure.

II. Säuren der Ölsäurereihe: CnH2n−2O2; ungesättigte Säuren:

C4H7COOH Tiglinsäure

C15H29COOH Hypogaeasäure

C15H29COOH Physetölsäure

C15H29COOH Lycopodiumölsäure

C17H33COOH Ölsäure

C17H33COOH Rapinsäure

C17H33COOH Elaïdinsäure

C17H33COOH Isoölsäure

C18H35COOH Döglingsäure

C18H35COOH Jecoleïnsäure

C21H41COOH Erucasäure

C21H41COOH Brassidinsäure

C21H41COOH Isoerucasäure

Die höheren Säuren sind mit Wasserdampf nicht flüchtig; ihre Bleisalze sind in Äther löslich.

III. Säuren der Linolsäurereihe: CnH2n−4O2, in trocknenden Ölen, absorbieren leicht Sauerstoff (vgl. S. 553):

C17H31COOH Linolsäure

C17H31COOH Taricinsäure

C17H31COOH Hirseölsäure

C17H31COOH Telfairasäure

C17H31COOH Elaeomargarinsäure

IV. Säuren der Linolensäurereihe: CnH2n−6O2:

C17H29COOH. Linolensäure, Isolinolensäure und Jecorinsäure.

V. Säuren der Isansäurereihe: nH2n−8O2. Isansäure, Terapinsäure.

VI. Säuren der Lanopalminsäurereihe. Hydroxylierte Säuren: CnH2nO3:

C16H32O3 Lanopalminsäure, C31H62O3 Coccerinsäure.

VII. Säuren der Ricinolsäurereihe. Hydroxylierte Säuren: CnH2n−2O3:

C18H34O3 Ricinolsäure, Isoricinolsäure, Ricinelaïdinsäure, Ricinsäure und Quittenölsäure.

VIII. Säuren der Dioxystearinsäurereihe: CnH2nO4:

C18H36O4 Dioxystearinsäure, C30H60O4 Lanocerinsäure.

IX. Säuren der Reihe: CnH2n−2O4, zweibasisch, gesättigt: C22H42O4 Japansäure.

Medullinsäure, Moringasäure, Theobrominsäure, Crotonoleïnsäure, Umbellulsäure sind zu streichen (LEWKOWITSCH). Die einzelnen Fettsäuren und Alkohole sind beschrieben in LEWKOWITSCH, Chem. Technol. u. Analys. d. Öle usw.

Die Alkoholhälfte der Ester gehört in folgende Reihen:

I. Alkohole der Äthanreihe CnH2n+2O: C13H28O Pisangcerylalkohol, C16H34O Cetylalkohol (Äthal), C24H50O Carnaubylalkohol, C26H54O Cerylalkohol, C30H62O Myricylalkohol (Melissylalkohol), C33H68O Psyllostearylalkohol.

II. Alkohole der Allylreihe: CnH2nO: C12H24O Lanolinalkohol.

III. Alkohole der Reihe:CnH2n−6O: C17H28O Ficocerylalkohol.

IV. Alkohole der Glycolreihe CnH2n+2O2: C30H62O2 Coccerylalkohol.

V. Alkohole der Reihe CnH2n+2O3: C3H8O3 Glycerin.

VI. Alkohole der hydroaromatischen Reihe: C26H44O Cholesterin, Phytosterin und Isocholesterin, C27H44O Sitosterin u. and. Phytesterine.

Die Fette im engeren Sinne sind alle Glycerinester, wie — nachdem SCHEELE das Glycerin entdeckt — zuerst CHEVREUL feststellte und BERTHELOT (1854) durch die Synthese bestätigte. Die Bindung der Fettsäuren am Glycerin erfolgt entweder in der Weise, daß alle drei Hydroxyle des Glycerins mit der gleichen Fettsäure abgesättigt sind nach dem Typus:

,

also z. B. Tripalmitinsäure-, Tristearinsäure- und Trioleïnsäure-Glycerinester entstehen — man bezeichnet diese als Tripalmitin, Tristearin und Trioleïn — oder die drei Hydroxyle mit zwei oder drei verschiedenen Fettsäuren sich nach dem Typus:

,

,

,

,

paaren, also gemischte Glyceride entstehen. Auch diese sind in den von der Natur gebildeten Fetten neuerdings häufig gefunden worden, seit BELL und LEWIN ein Oleopalmitobutyrat:

in der Butter annahmen und HEISE (1896) ein Oleodistearin:

im Mkányifett und der Kokumbutter auffand, das nach SACK auch im Fett der Mangifera indica auftritt.

Der Vergleich der Formeltypen zeigt, daß es auch zahlreiche Strukturisomere geben muß, deren Zahl bei den Säuren, die doppelte Bindungen besitzen, noch durch den Wechsel in der Lage dieser letzteren vermehrt wird. Die Stereoisomerie der Fettsäuren wurde durch das Studium der Spaltungsprodukte der Ozonide bestätigt (HARRIES und THIEME). Ob Fette, bei denen nicht alle Hydroxyle des Glycerins mit Fettsäuren verestert sind, z. B. vom Typus:

,

oder

,

in der Natur vorkommen, ist noch zweifelhaft. Bisher ist nur ein Diglycerid, das Dierucin, gefunden worden.

Die eigentlichen Fette sind also nach der Formel:

zusammengesetzt, wobei n = p = r oder n nicht = p bzw. r und μ = η = ξ oder μ nicht η bzw. ξ sein kann. μ, η, ξ sind kleine gerade Zahlen.

Die Wachse besitzen zumeist die Formel:

Der charakteristische Alkohol ist gesättigt oder ungesättigt, aliphatisch oder zyklisch, aber einwertig. x kann eine kleine gerade oder ungerade Zahl bedeuten (ULZER und KLIMONT).

Auch in gewissen Lecithinen sind Fettsäurereste enthalten, z. B. im Distearyllecithin:

Es darf als Regel gelten, daß die Fette nie nur aus einem Glycerid bestehen, und daß ein oder mehrere Glyceride (besonders die der Palmitinsäure, Stearinsäure und Ölsäure, d. h. Palmitin, Stearin und Oleïn) vorzuherrschen pflegen. Das Vorkommen von Glyceriden niederer Fettsäuren gibt einem Fette einen besonderen Charakter (Cocosöl). Unter den natürlichen Bedingungen feste Fette gibt es in den Pflanzen nicht. Ich fand in den Tropen, d. h. in der Heimat der betreffenden Pflanzen, auch Palmfett, Cocos- und Cacaofett flüssig.

Die elementare Zusammensetzung der Öle, d. h. ihr Bruttogehalt an C, H und O ist ziemlich übereinstimmend, nur Palmkern-, Cocos- und Ricinusöl zeigen abweichende Zahlen, besonders einen niedrigeren Kohlenstoffgehalt.

In Wasser sind die Fette außerordentlich schwer löslich, in kaltem Alkohol etwas besser (leicht nur Ricinus-, Croton- und Olivenkernöl), leicht in Äther, Schwefelkohlenstoff, Chloroform, Benzol und Petroläther (Ricinusöl löst sich nicht in Petroläther). Beim Erhitzen der Fette über 260° (am besten unter Zusatz von saurem Kaliumsulfat) tritt Zersetzung ein und es entwickeln sich (aus dem Glycerin) Dämpfe von Acrolein: CH2n−4=CH.COH. Bei der Destillation entstehen bisweilen (Ricinusöl) gallertige Massen. Beim Durchleiten von Luft durch erhitzte Öle werden diese viskoser. Schwefel wird von Ölen, die ungesättigte Fettsäuren enthalten, addiert. Die Produkte (Factis) sind Kautschuksurrogate. Salpetrige Säure verwandelt Öle mit ungesättigten Fettsäuren der Ölsäurereihe (z. B. Olivenöl, Mandelöl) in feste Massen (Elaidinsäureglyceride). Fette, die Ölsäure, CH3.(CH2)7CH=CH(CH2)7COOH, enthalten, — es sind dies fast alle — liefern bei der Oxydation zuerst Dioxystearinsäure:

dann Pelargonsäure CH3(CH2)7COOH und Azelainsäure COOH(CH2)7COOH. Ölsäure liefert mit Ozon ein Ozonid (HARRIES):

Dies Ozonid der Ölsäure zerfällt in Nonylaldehyd bzw. Pelargonsäure und Azelainsäure bzw. deren Halbaldehyd.

Je größer das Jodabsorptionsvermögen eines Fettes ist, um so leichter absorbiert es auch Sauerstoff. Es hängt dies also mit den doppelten Bindungen zusammen (vgl. S. 553).

Trockene Luft wirkt, wenn jede Feuchtigkeit und das Licht ausgeschlossen wird, auf Fette nicht ein. Trockene Fette bleiben daher in zugeschmolzenen Röhren unbeschränkte Zeit unverändert. Ist etwas Feuchtigkeit zugegen, so werden geringe Mengen Fettsäuren gebildet, aber das Fett wird noch nicht ranzig. Feuchte Fette werden dagegen an Luft und Licht bald ranzig. Es spalten sich unter dem Einflusse der fettspaltenden, in Wasser unlöslichen, nur in Gegenwart von Säuren wirksamen, also durch diese (Milchsäure? HOYER) aktivierten Enzyme (Lipase, Steapsin — zuerst von GREEN und SIGMUND 1891 nachgewiesen), die z. B. in den Samen regelmäßig vorkommen, aber auch sonst häufig sind (die einzelnen Lipasen sind untereinander verschieden, DUNLAP und SEYMOUR), die Ester auf, die Fettsäuren werden frei und die Säurezahl steigt. Diese Aufspaltung erfolgt sehr viel rascher durch Kochen mit Wasser, durch überhitzten Wasserdampf, durch Mineralsäuren, die als Katalysatoren wirken, Alkalien, Kalk oder Metalloxyde (PbO) (Seifen-, Pflaster-, Stearinkerzen- und Glycerinfabrikation). Bleiben die Fette mit der Substanz aus der sie bereitet wurden, z. B. mit dem stets enzymreichen Fruchtfleisch, in Berührung, so spalten sich die Glyceride schnell und es kann dann das Fett bis zu 70% (Bagasseolivenöl) oder fast ganz (Palmöl) in Fettsäuren zerfallen. Die primäre Ursache des Ranzigwerdens sind also Enzyme in Gegenwart von Feuchtigkeit, wodurch zunächst die Fette sauer werden, aber ranzig sind sie damit noch nicht. Sie werden es erst, wenn die sauren Fette der Luft und dem Lichte ausgesetzt und dadurch oxydiert werden (RITSERT, DUCLAUX, LEWKOWITSCH, GEITEL). Mikroorganismen können Ranzidität einleiten, sind aber nicht nötig dazu (DUCLAUX, RITSERT, MJOEN). Fette mit Glyceriden ungesättigter Fettsäuren neigen mehr dazu ranzig zu werden, als solche von höheren, gesättigten Fettsäuren. Ranzige Fette geben im allgemeinen eine höhere Acetylzahl (LEWKOWITSCH) und zeigen eine geringere Verbrennungswärme (STOHMANN).

Wird durch erwärmte Öle Luft oder Sauerstoff geblasen, so erfolgt eine energische Oxydation, das spezifische Gewicht steigt, die Öle werden viskos («geblasene Öle»).

Die meisten Fette sind optisch-inaktiv, rechtsdrehend sind z. B. Ricinusöl, Crotonöl, Lorbeeröl und Sesamöl. Die Zahl für die mittlere Molekularrefraktion ist bei den meisten Ölen ziemlich dieselbe, z. B. Leinöl 447, Olivenöl 447, Sojabohnenöl 450, Sesamöl 451 (KLIMONT).

Mikroskopisch betrachtet zeigen die festen oder halbfesten Fette regelmässig reichliche Kristallbildungen, vorwiegend Nadeln, eingebettet in tropfbar-flüssige Massen.

Die Wachse sind chemisch den Fetten sehr ähnlich, haben aber eine ganz andere physiologische Funktion; als Überzüge auf des Vegetations- und Reproduktionsorganen von Pflanzen warmer Klimate dienen viele als Schutz gegen Verdunstung, Benetzung, Licht. Bei anderen ist die Funktion unklar. Das Bienenwachs dient zum Bau der «Zellen». Die Wachsester sind schwerer verseifbar als die Fettester.

Die Methoden der Analyse der Fette sind physikalische und chemische. Von den physikalischen kommen in Betracht: Die Bestimmung des spez. Gew., des Schmelz- und Erstarrungspunktes, des Brechungsexponenten (mit dem Refraktometer), der Viskosität (mit dem Viskosimeter, vgl. oben S. 450, am gebräuchlichsten sind ENGLERS und REDWOODS Viskosimeter), des Rotationsvermögens, des mikroskopischen und spektroskopischen Verhaltens, der Konsistenz, der Löslichkeit, des elektrischen Leitungsvermögens und des Verhaltens im Kolorimeter. Bei den chemischen Methoden unterscheidet man: Die Bestimmung der Säurezahl, der Verseifungszahl (Köttstorferzahl), der Jod- (und Brom-)zahl (HÜBL, WIJS), der Reichert-Meissl- bzw. Reichert-Wollnyzahl (flüchtige Fettsäuren), der Hehnerzahl (Unverseifbares und unlösliche Fettsäuren) und der Acetylzahl. FOKIN benutzte die «Wasserstoffzahl», d. h. die Zahl ccm H bei 0° und 760 mm D (1 l = 0,098 g), welche mit 1 g Substanz bei Behandlung mit molekularem Platin in Reaktion treten, um die Zahl der doppelten Bindungen in ungesättigten Fettsäuren zu bestimmen. Bisweilen werden auch die Glycerinmenge und die Diglyceride bestimmt. Qualitative Reaktionen sind die Elaidinprobe, die Sauerstoffabsorptionsprobe und die Hexabromidprobe (zum Nachweis der Linolensäure). Auch die Bestimmung der Temperaturerhöhung beim Vermischen mit konz. Schwefelsäure wird vielfach zur Identifizierung der Öle benutzt (MAUMENÉS Probe). Für genauere Untersuchungen ist auch die Prüfung der isolierten Fettsäuren (auf Menge, spez. Gew., Schmelz- und Erstarrungspunkt, Siedepunkt, Löslichkeit, Brechungsexponent usw.) nötig. Der Fettgehalt von Drogen wird durch Extrahieren mit niedrig siedendem Petroläther im Soxhlet, Verseifen des Extraktionsrückstandes und Abziehen des Unverseifbaren bestimmt.

Die meisten Öle sind gelblich, einige fast farblos (manche Sorten von Olivenöl und Ricinusöl), andere tiefgelb (Leinöl, frisches Palmfett), die Fette meist rein weiß (Cocosfett, Schweinefett). Einige sind durch Farbstoffe gefärbt, die sich beim Auspressen im Fett lösten. So ist Lorbeeröl durch Chlorophyll, Muskatbutter durch einen gelbroten, Astrocaryafett durch einen zinnoberroten Farbstoff gefärbt. Ein Chlorophyllgehalt der fetten Öle, der besonders bei Olivenöl und Hanföl beobachtet wurde, läßt sich leicht mit dem Spektroskop nachweisen (TSCHIRCH 1884).

Die direkte Synthese der gewöhnlichen Glyceride gelingt mit fast theoretischer Ausbeute durch Erhitzen stöchiometrischer Mengen von Fettsäure und Glycerin auf 200–250° unter gewöhnlichem Druck, wenn man das bei der Reaktion entstehende Wasser fortwährend entfernt und den atmosphärischen Sauerstoff mittelst eines inerten Gasstromes (CO2) fernhält (BELUCCI 1911. Weitere Synthesen bei SCHACHT.) Auch mit Hilfe von Enzymen ist sowohl im Organismus wie in vitro ein Aufbau von Fetten möglich, da, wie zuerst HANRIOT gezeigt hat, z. B. die fettspaltende Serolipase auch reversibel synthetisierend wirkt (biochemische Fettsynthese). Solche Synthesen gelangen BODENSTEIN und DIETZ, TAYLOR, POTTEVIN u. and.

LEWKOWITSCH gibt folgende Einteilung der Fettkörper:

Öle (flüssig), vegetabilische: 1. trocknende, 2. halb trocknende, 3. nicht trocknende. animalische: 1. von Seetieren: α) Fischöle, β) Leberöle, γ) Tran. 2. Von Landtieren.

Fette (fest), a) vegetabilische, b) animalische.

Alle vegetabilischen Öle und Fette enthalten als Begleiter Phytosterine, alle animalischen Cholesterine. Die chemischen Beziehungen derselben zu den Fetten sind noch nicht aufgeklärt.

Eine ziemlich vollständige tabellarische Übersicht über die Zusammensetzung, sowie die physikalischen und chemischen Konstanten von 225 pflanzlichen und tierischen Fetten und 10 Wachsen findet sich in ULZER-KLIMONT, Allgem. physiol. Chemie d. Fette 1906. Genaueres bei LEWKOWITSCH.

Der mikrohistochemische Nachweis der Fette gelingt in allen Fällen, wo das Öl ungesättigte Säuren (z. B. Ölsäure) enthält mittelst Osmiumsäure: die Tropfen färben sich im Wasserpräparat bei gelindem Erhitzen mit dem Reagens braun (die Reaktion tritt aber auch bei anderen Substanzen mit doppelten Bindungen ein). In den Samen, welche ich selbst angesehen habe (und das ist eine große Zahl) ist das fette Öl in den Zellen niemals in Tropfen, sondern in innigster Mischung oder Verbindung mit dem Plasma vorhanden. Es färbt sich daher die ganze zwischen den Aleuronkörnern liegende Masse mit Osmiumsäure braun, wenn man den Schnitt direkt in diese einträgt. Dieses von mir Ölplasma genannte Gebilde wird aber durch Wasser zersetzt und es treten daher Tropfen hervor, wenn man den Schnitt in Wasser legt. Auch in den Zellen der Vegetationsorgane entsteht das Öl immer im Plasma und dieses ist wohl regelmäßig ölhaltig. Bisweilen entsteht es in sog. Oleoplasten (Elaeoplasten, Ölbildnern). Doch bestreitet UHLMANN, daß es sich hier um fettes Öl handelt.

Ein weiterer Nachweis der Fette beruht auf ihrer Verseifbarkeit mit Alkalien. Man legt den Schnitt in Kaliammoniak: es entsteht eine wasserlösliche Seife (MOLISCH 1891). Die Verseifung tritt schon bei gewöhnlicher Temperatur bei längerem Liegen ein und es treten dabei charakteristische Kristalle auf (HARTWICH und UHLMANN). Die Fetttropfen nehmen auch Farbstoffe begierig auf, wie z. B. Alkanna, Chinolinblau, Sudan, Chlorophyll und den roten Farbstoff, der bei der RASPAILschen Zuckereiweißreaktion entsteht.

In der Therapie spielen die Fette besonders eine Rolle als Salben- und Linimentvehikel. Alle Öle wirken zudem, wenn eßlöffelweise genommen, abführend, auch per anum, Gummiölemulsionen dagegen stopfend. Die gepreßten Öle verhalten sich nicht ganz gleich wie die mit Lösungsmitteln extrahierten des gleichen Objektes.

In der Pharmazie benutzt man auch die mit Kohlensäure gesättigten Öle (Brauseöle), sowie die bromierten und jodierten Fette. Der Lösungsfähigkeit des Phosphors in Öl bedient man sich zur Herstellung des Ol. phosphoratum.

Die Verbrennungswärme der Fette ist sehr beträchtlich. Während die Kohlehydrate im Durchschnitt nur 3900 g-Kalorien geben, geben die Fette im Durchschnitt 9300 g-Kal. Sie spielen daher im Stoff- und Kraftwechsel der Organismen eine große Rolle und sind wertvolle Nahrungsmittel.

Die Frucht- und Samenöle werden meist durch Pressung (kalte oder warme) gewonnen (vgl. I, S. 134). Die hierbei erhaltenen Preßkuchen, die immer noch mehr oder weniger Fett zurückhalten, sind wertvolle Futter- oder Düngemittel, da in ihnen sich noch das ganze Eiweiß (besonders in Form von Aleuronkörnern) befindet. Neuerdings werden aber auch viele Fette durch Extraktion, besonders mit Schwefelkohlenstoff und Benzin resp. Petroläther (weniger mit Tetrachlorkohlenstoff, Chloroform, Aceton, Benzol, Chloräthylenen oder Chloräthanen) gewonnen. Bei beiden Methoden gehen auch in Fett lösliche Begleiter der Fette in Lösung (Farbstoffe, giftige Substanzen, ätherische Öle s. oben).

Die Apparate zur Ölgewinnung sind abgebildet bei STIEPEL a. a. O.

Der Bedarf an Pflanzenfetten ist ein ungeheurer. Deutschland allein führte 1906 für 30 Mill. Mark Pflanzenöle und für 202,49 Mill. Mark Ölsamen ein (TUNMANN). Von tropischen Ölen kommen jährlich über 2000 Mill. kg an den Weltmarkt. Marseille ist ein wichtiger Ölhandelsplatz für Oliven, Arachis, Sesam, Copra und ihre Öle.

Die Methoden zur Reinigung der Fette beziehen sich auf die Entfernung mechanischer Verunreinigungen, gelöster Eiweißstoffe, Harze, Pflanzenschleim, freier Fettsäuren, Riechstoffen (Desodorisation) oder sind Bleichmethoden oder Methoden, welche auf eine Geschmacksverbesserung oder größere Haltbarkeit abzielen oder eine Erhöhung des Schmelzpunktes oder Herabsetzung des Erstarrungspunktes bezwecken (Demargarinierung).

Geschichte. Schon das Urvolk der Sumerer bediente sich des Oliven- und Ricinusöls, die Babylonier des Sesamöls. Öl (mrḥt) und Talg (ʿd) werden sehr oft in ägyptischen und auch in babylonischen Rezepten genannt (vgl. I, S. 467). OEFELE nennt (I, S. 486) 16 tierische Fette, die in babylonischen Apotheken zu finden waren. Die Gewinnung von Öl (umgebildet aus lat. oleum) aus Pflanzen durch Auspressen ist also sehr alt. Das Olivenöl wurde besonders zu Beleuchtungszwecken schon im alten Ägypten benutzt, ebenso in Palästina schon zu MOSIS Zeit. Als Salbmittel bedienten sich seiner auch die alten Griechen, die es von den Ägyptern kennen lernten (HERODOT). Auch das Öl der Mandeln und Nüsse war bereits den Alten bekannt. Sie benutzten die Öle auch als Speiseöle und zur Enfleurage, d. h. zum Ausziehen von Wohlgerüchen aus Pflanzen (viele Vorschriften bei DIOSKURIDES). Als Salbengrundlage begegnen wir dem Wollfett (Oisippus) schon in sehr früher Zeit (PLINIUS). Die Bereitung der Butter aus Pferdemilch durch starkes Schütteln kannten bereits die Skythen (HERODOT) und HIPPOKRATES nennt das Produkt schon βούτυρον. DIOSKURIDES, der das Buttern beschreibt, erwähnt Butter aus Schaf- und Ziegenmilch. Seife, aus Buchenasche und Ziegenfett in Germanien und Gallien bereitet, erwähnt PLINIUS (Hist. nat. 28, 191) als gallische Erfindung. Sapo ist entweder keltischen Ursprungs oder stammt aus ahd. seifa, seifar (= Schaum), agls. sápe, urgerm. saipa und hängt wohl mit lat. sêbum (= Talg) zusammen. Die Gallier und Germanen benutzten die Seife zum Rotfärben der Haare (agls. taelg = Talg und Farbe — bei OVID: femina canitiem germanis inficit herbis) und so wurde sie auch zunächst in Rom benutzt, bis man sapo spissus herstellen lernte und zum Waschen anwendete. Schon damals scheint der Unterschied von harter und weicher Seife bekannt gewesen zu sein. Die Gallier bereiteten harte mit der Asche von Seepflanzen (Soda), die Germanen weiche mit der Asche von Landpflanzen (Kali) und auch GALEN, der Seife, aus Rinder-, Ziegen- und Hammelfett mit Aschenlauge und Kalk bereitet, kennt, erwähnt deutsche Seife zum Waschen und als Heilmittel. Übrigens blühte auch im alten Rom die Seifensiederei um Christi Geburt, wie wir aus Pompeji wissen (in früherer Zeit dienten Aschenlauge, Nitrum (Soda), alkalisches Wasser und gefaulter Urin, auch wohl saponinhaltige Pflanzen zum Waschen). AËTIUS (VI. Jahrh.) erwähnt die schwarze Seife, ebenso die Arzneibücher von Wales (I, S. 683). Später war Marseille und sodann Venedig Sitz großer Seifenfabriken (daher Sapo venetus). Die Bleipflasterdarstellung war den Alten ebenfalls bekannt (DIOSKURIDES, PLINIUS). Nach Germanien kam das Öl, die Sache und das Wort, wohl erst im III. Jahrh. n. Chr. (oleum über kelt. und got. alêw, ahd. olei, agls. ele in Öl). TACHENIUS wußte, daß Alkalien und Metalloxyde die Fette verändern und daß in ihnen eine Säure enthalten ist. MORAY beschrieb (1665) das Walrat, HOMBERG (1687) die Gewinnung des Cacaofettes, LEMÉRY (1708) das Bienenwachs; GEOFFROY, der (1741) die Löslichkeit der Öle studierte, wußte, daß die Seife eine andere Löslichkeit hat, wie das ihr zu Grunde liegende Öl, und MACQUER fand (1745) Säuren in der Seife. FRÉMY erkannte die Analogie der Bleipflasterbildung mit der Seifenbildung. Die Entdeckung, daß rauchende Salpetersäure viele Öle verdickt, machte schon BOYLE (1661) und der Marseiller Apotheker POUTET fand, daß die salpetrige Säure der Grund der Bildung des von ihm Elaïdin genannten Körpers ist. MACQUER meinte (1745), daß ein Fett um so dicker sei, je mehr es «Säure» enthalte. Dann untersuchten noch im XVIII. Jahrh. BUCHNER, DE ROI, VALLERIUS, SALUCES, WATSON u. and. viele Öle und CARTHEUSER (I, S. 962) das Wachs, den Talg, die Seife und die tierischen Fette. CRELL unterwarf sie der trockenen Destillation (1778) und führte (für die flüchtigen Säuren) den Namen Fettsäuren ein. Dem Prozesse des Ranzigwerdens wandte schon J. C. GEHLEN in seiner Dissertatio de oleis pinguibus rancidis Lips. 1776 seine Aufmerksamkeit zu. FOURCROY, der das Leichenwachs auffand, vereinigte dies mit dem von GREN (1788) entdeckten Gallensteinfett (Cholesterin) und dem Walrat zu der Klasse der Fettwachse (Adipocire). SCHEELE entdeckte zwar das Glycerin oder Ölsüß, principium dulce oleorum (De materia saccharina peculiari oleorum expressorum et pinguedinum 1783) und erkannte, daß es beim Erhitzen aller Öle und Fette mit Bleiglätte entsteht, vermochte aber nicht die Natur der Fette aufzuklären, so daß noch LAVOISIER sie für Kohlenwasserstoffe hielt! Die Natur der Fette, wie der Prozeß der Seifenbildung, wurde in einer denkwürdigen umfassenden Untersuchung der tierischen Fette 1811–1823 von CHEVREUL aufgeklärt, der auch bereits feste (acide margarique, a. stéarique), flüssige (acide oléique) und flüchtige (acide delphique [= Baldriansäure] Buttersäure, Capron- und Caprinsäure) unterschied, und die Namen Stearin (von στέαρ = Talg), Elain (von ἔλαιον = Öl) und Cetin (Walrat) einführte. HEINTZ und BERTHELOT setzten die Untersuchungen von CHEVREUL fort. Sie zerlegten die Margarinsäure in Palmitin- und Stearinsäure. BERTHELOT, LUCA und WURTZ erkannten das Glycerin als dreiwertigen Alkohol.

Lit. BECKMANN, Beitr. z. Gesch. d. Erfind. — CHEVREUL, Les corps gras d’origine animale. Paris 1815–1823 (Neudruck 1889). — BERTHELOT, Am. chim. (3) 41, 216 (1854). — HANRIOT, Compt. rend. 1896, 1897 und 1901. — P. SCHACHT, Beitr. z. Synthese der Fette. Diss. Zürich 1908. (Dort eine Liste d. synthet. dargest. Glyceride und eine Literaturübersicht.) — GRÜN, Über d. Konstitut. d. Fette. Habilitationsschr. Zürich 1907. — CORELLI, Unters. über d. Spalt. v. Fett. Diss. Zürich 1909. — SKOPNIK, Synth. dreifach gemischt. Glyceride. Diss. Zürich 1909. — DUNLAP und SEYMOUR, Journ. amer. chem. soc. 27 (1905), 935. — Verbrennungswärme d. Fette: STOHMANN, Journ. prakt. Chem. 31, 32, 42, 44 und 45 und SHERMAN u. SNELL, Journ. am. chem. soc. 1901, 164. — KLIMONT, Zeitschr. angew. Chem. 24, 254 (1911). — HEISE, Arbeit. aus d. kais. Gesundheitsamt (1896) 12, 540; 13, 302. — BELUCCI, Atti R. Accad. dei Lincei (5) 20, I 235 (1911). — FOKIN, Zeitschr. anal. Chem. 1909. — MOLISCH, Histochemie 1891. — HARTWICH und UHLMANN, Nachw. fett. Öle durch mikrochem. Verseif. Arch. Pharm. 1903, 111. — UHLMANN, Dissert. Zürich 1902. — BELL, Chemistry of foods II. — LEWKOWITSCH, Chem. Technologie u. Analyse d. Öle, Fette und Wachse. Braunschweig 1905. — ULZER und KLIMONT, Allgemeine u. physiol. Chemie d. Fette. Berlin 1906. — EULER, Pflanzenchemie. — MARCUSSON, Laboratoriumsbuch für d. Industrie d. Öle und Fette 1911. — TSCHIRCH, Einige prakt. Ergebn. meiner Unters. über d. Chlorophyll. Arch. Pharm. 1884. — Verzeichnis der fettliefernden Pflanzen bei MIKOSCH, in WIESNER, Rohstoffe, II. Aufl. — Untersuchungsmethoden: LEWKOWITSCH in LUNGE, Chem. Techn. Untersuchungsmeth. 5. Aufl. III (1905). — BENEDIKT-ULZER, Analyse d. Fette u. Wachsarten. — Für das Technische: HEFTER, Technologie d. Fette u. Öle 1906. — SCHÄDLER, Technol. d. Fette. 2. Aufl. 1892. — STIEPEL, Fette, Öle, Wachse in WEYLS Einzelschriften z. chem. Technolog. 1911 (reich illustriert). — Über die Fortschritte berichtet der Jahresbericht auf dem Gebiete d. Fette, Öle u. Wachsarten in der Chem. Revue über die Fett- und Harzindustrie. — Ein Spezialkomitee für die einheitliche Untersuchung von Fetten und pflanzlichen Ölen der Amer. chemical Society schlug 1910 einheitliche Methoden vor (Rev. über d. Fett- u. Harzindustr. 1911, 84).

I. Vegetabilische Öle und pflanzliche Öldrogen.

1. Trocknende Öle.

In den trocknenden Ölen sind Fettsäuren mit mehreren doppelten Bindungen enthalten, die also eine hohe Jodzahl zeigen und welche durch Sauerstoffaufnahme erhärtende Oxyde bilden. Ölsäure gehört nicht zu diesen, wohl aber Linolsäure und Linolensäure. Sie geben nicht die Elaidinreaktion, wohl aber, wenn Linolensäure vorhanden, Hexabromid. Die Sauerstoffaufnahme des Leinöls, die Linoxin(Linoxyn-)bildung erfolgt immer an den doppelten Bindungen. ROCH denkt sich dieselbe folgendermaßen:

1 Phase

(Peroxyd)

2 Phase

(Oxyd)

Linoxin ist in allen Lösungsmitteln unlöslich. Die Sauerstoffaufnahme ist (z. B. beim Leinöl) lebhafter, wenn man erst mit Sikkativen (Manganborat, Bleioxyd) kocht.

GENTHE hielt den Vorgang beim Trocknen des Leinöls für eine molekulare Autoxykatalyse und die Sikkative nur für Pseudokatalysatoren, FOKIN für eine hemimolekulare Autoxykatalyse, FAHRION meint, daß bei der Autoxydation zuerst Peroxyde entstehen, daß diese alsdann umgelagert werden und dadurch zu Wasserabspaltung und Komplexbildung führen. Die Sikkative ändern den Chemismus des Autoxydationsvorganges nicht, sondern wirken nur als Katalysatoren beschleunigend oder abkürzend.

Bei Einlegen in die MOLISCH’sche Kaliammoniakmischung liefern die trocknenden Öle kleine Sphärite (UHLMANN).

Lit. MULDER, Chemie d. austrocknenden Öle. Deutsch. von MÜLLER. 1867. — ROCH, Trocknende Öle. Zeitschr. angew. Chem. 1911, 80. — HAZURA, Monatsh. f. Chem. 9, 180. — HEHNER u. MITCHELL, Analyst. 1898, 313. — ROLLETT, Chem. Centralbl. 1909, II, 1984. — FAHRION, Zeitschr. f. angew. Chem. 23 (1910), 722 u. 1910, 1106. — GENTHE, Ebenda 19, 2087. — FOKIN, Ebenda 22, 1451. — ORLOW, Journ. Russ. Phys. Chem. Ges. 42, 658 (Chem. Centralbl. 1910, II, 1529). — H. INGLE (Bemerk. über Leinöl), Journ. Soc. chem. ind. 30, 344.

Semen Lini und Oleum Lini.

Sowohl über die Stammpflanze, Linum usitatissimum, wie über den Samen und sein Öl (Leinöl, Leinsamenöl, huile de lin, linseed oil, oil of flaxseed) ist bereits oben (S. 314) berichtet worden. Der Ölgehalt des Leinsamens schwankt von 24,66 bis 44,46% der Trockensubstanz (KÖNIG); obere Grenze der Asche 5% (HAUKE).

HARRY INGLE, der mehrere tausend Leinöle untersuchte, fand Jodzahl und spez. Gew. bei:

Baltischem Leinöl 195 0,9357

Calcutta Leinöl 185 0,9322

Deutschem Leinöl 181,5 0,9322

Englischem Leinöl 185 0,9332

Laplata Leinöl 179,5 0,9315

Menhaden Leinöl 182 0,9328

FAHRION gibt jetzt (vgl. oben S. 323) dem Leinöl folgende Zusammensetzung: Unverseifbares 0,6%, gesättigte Fettsäuren 9,3%, Ölsäure 17,5%, Linolsäure 30%, Linolensäure 38%.

Linolsäure (C17H31COOH) enthält zwei doppelte Bindungen, addiert also vier Atome Brom, gibt oxydiert zunächst Sativinsäure (Tetraoxystearinsäure), dann Azelainsäure: COOH(CH2)7COOH.

Linolensäure (C17H29COOH) ist auch eine ungesättigte Säure (s. oben S. 546). Sie liefert ein Hexabromid und gibt oxydiert Linusinsäure (Hexaoxystearinsäure). Beide Säuren sind flüssig.

Die Annahme einer Isolinolensäure (HAZURA) oder β-Linolensäure (ERDMANN, BEDFORD und RASPE) erschien nach ROLLETT unbegründet, doch halten ERDMANN und BEDFORD (1910) ihre Angaben aufrecht.

Das Komitee der Amer. Soc. for testing materials schlägt (ungefähr übereinstimmend mit BENEDIKT-ULZER) folgende Konstanten für reines Leinöl vor: spez. Gewicht 0,935–0,932, Brechungsexponent bei 25°: 1,4805–1,4790, Säurezahl 6, Verseifungszahl 192–189, Jodzahl (HANUS) 190–178, Unverseifbares 0–1,5. Doch fand MEISTER bei absolut reinen Leinölen unter 170, der bisher angenommenen unteren Grenze, liegende Jodzahlen (160,2 bis 164,5).

Die Verbrennungswärme des Leinöls beträgt bei konstantem Volumen 9364 bis 9379, bei konstantem Druck 9379 bis 9394 g-Kalorien (SHERMAN und SNELL). Der Entflammungspunkt liegt bei 205–225° (RAKUSIN).

Hamburg importierte 1908 seewärts 33211 dz Leinöl, davon aus den Niederlanden 25975; 1907 geringe Mengen auch aus den russischen Ostseehäfen und Schweden. Frankreich importierte 1908 18955 Quint. Leinöl, die Hälfte etwa aus Belgien, dann aus China, England und den Niederlanden.

Britisch Indien exportierte Linseed 1907/08: 2290185, 1908/09: 1405467 cwts nach England und engl. Besitzungen und 1907/08: 3907697, 1908/09: 1804080 cwts nach anderen Ländern. Die Gesamtausfuhr an Leinöl betrug 1908/09: über 36000 Gallons. Die Vereinigten Staaten exportierten 1908: 4277313, 1909: 882899 bushels Flaxseed, 1908: 367883, 1909: 273029 Gallons Linseed oil und 1909: 682764545 pounds Linseedoilcake.

In dem Leinsamenpreßkuchen (Leinkuchen, Placenta sem. lini, Pain ou gâteau de lin, linseedcake) sind neben dem Schleim auch alle stickstoffhaltigen Substanzen des Samens enthalten, also das Protein Edestin, krist. Globulin, ein Albumin, wenig Proteosen und Peptone (OSBORNE und CAMPBELL), ferner Lecithin (SCHULZE und STEIGER), Lipase (SIGMUND), Protease (WILL), ein glykosidspaltendes Enzym (DUNSTAN, HENRY und AULD), Linamarin (Phaseolunatin, s. oben S. 322) und Reste des fetten Öls.

Die Zusammensetzung des Leinpreßkuchen in % ergibt sich aus folgender Tabelle:

KÖNIG GAROLA WAGNER HOLDE- FLEISS

Min. Max. Mittel

Wasser 9,54 20,50 12,19 12,86 10,40 13,43

Stickstoffhaltige Substanz 19,00 36,18 29,48 30,87 25,94 25,27

Fett 3,78 16,34 9,88 8,75 12,30 11,43

Stickstofffreie Substanz 24,54 46,58 29,91 28,48 34,81 30,72

Cellulose 5,42 16,50 9,69 11,88 10,75 11,72

Asche 5,13 16,50 9,69 7,16 5,80 7,40

Da der Leinpreßkuchen als Futtermittel sehr geschätzt, aber relativ teuer ist, so wird er oft verfälscht angetroffen, besonders mit Mohnsamen- und Arachispreßkuchen. COLLIN fand darin auch die Samen von Chenopodium polyspermum, Spergularia arvensis, Cerastium triviale, Spergula arvensis, sowie Leguminosensamen.

Das Flachswachs besteht aus Phytosterin, Cerylalkohol, Palmitin-, Stearin-, Öl-, Linol- und Linolensäure. F. = 61,5, Jodzahl 10.

Lit. Vgl. oben unter Trocknende Öle. — Chem. Lit. zusammengestellt in WEHMER, Pflanzenstoffe. — Über die Bestandteile der Aleuronkörner vgl. TSCHIRCH und KRITZLER, Ber. d. pharm. Ges. 1900, 264. — Preßkuchen: COLLIN-PERROT, Les résidus industriels.

Fructus Cannabis und Oleum Cannabis.

Syn. Hanfsamen: graine de chanvre, hemp seed, seme di canape. Die Pflanze: Hanf, Bästling, Hämp oder Hemp, in Österreich: Harf, Pastök und Hanef; in der Schweiz: Werch (die Frucht: Hausset), Tregel, Tschenevo, in Bünden: Chanf, im Tessin: Canape, Canapule. Die männliche Pflanze: Hanfhahn, fälschlich (weil kleiner) femmel oder fimmel (von femella = Weibchen — deutet auf späte römische Einflüsse), die weibliche Pflanze: Hanfhenne, Hänfin, Samenhanf, fälschlich mastel, masch, mäschel (von mas) — so schon im Corpusglossar. Bei GERARDE (Herbal 1633): der männliche wird Carl- oder Winter-H. genannt, der weibliche Barren- oder Sommer-H. — hemp (engl.) — chanvre, chènevis (franz.), cambre (norm.), chène (wallon.) — canappa (ital.) — câñamo (span.) — cánhamo (port). — hennep (holl.) — hamp (norweg.) — hampa (schwed.) — konópel (russ.) — καννάβι (griech.).

Bei DIOSKURIDES: κάνναβις, — bei PLINIUS: cannabis, — bei den späteren Griechen: σχινόστροφος, ἀστέριον. — Bei SIMON SETH: κανναβουρόσπερμα; — im Mittelalter: canabus, canapus, caniva, canopus, sechedenchi; bei der HILDEGARD: hanff, cannabus; — bei ALHERVI: schâh-dânadsch — bei IBN BAITHAR: kunnab. — In der Alphita, bei SERAPION und BARTHOLOMAEUS steht: canaps, cannabis, canapis caulis et canabit, cotumb, scehedenegi canabis, canurus, hemp. — ahd. hanaf, anord. hampr, mhd. hanef, hanf, nhd. hanf, nnd. hemp, angels. haenep, ndl. kennep, arab. kinnub, cannab, sansc. goni, sana, indrasana (= INDRAS Hanf), shanapu, banga, ganjika, beng. ganga. Die Früchte heißen hind.: ganjé-ke-bij, tam.: ganja-virai, beng.: ganja-bij — im pers. shahdánah = Königssamen (Pharm. ind.). In China heißt der Hanf ho-ma, ta-ma oder ya-ma (auch für andere Gespinstpflanzen benutzt, DRAGENDORFF), die Frucht: ho-ma-jin.

Etym. Die frühere Annahme, daß das Wort Hanf aus cannabis entstanden sei, ist jetzt aufgegeben (KLUGE, SCHRADER). Beide Worte werden jetzt von der gemeinsamen Wurzel canna, ken (çaṇa im Sanskrit = Rohr) abgeleitet, die sich im čeremissischen kehe, kiné (= Hanf) findet und die auch im turko-tartar. kin-dūr (= Hanf) bulgar. kenevir (= Leinwand) und magyar. kender (= Hanf) auftritt. Die Endsilbe bis bringt SCHRADER zu dem syrjänischen und wotjakischen piš, puš (= Nessel) in Beziehung. (Bei WRIGT-WÜLCKER Agls. a. O. E. Vocabularies I, 198: cannabum haenep vel pis.). Cannabis wäre also selbst Lehnwort und ein Doppelwort, das Hanf-Nessel(ein Pleonasmus!) bedeutete. Alban. heißt der H. kanep, lit. kanapis, aslov. konoplja, armen. kanap, npers. kanab. (Die Ableitung von cannabis und Hanf aus der in Banga und Gangika enthaltenen Sanskritwurzel ang oder an [DE CANDOLLE] leuchtet mir nicht ein.) Der Name kann nicht bis in die indogermanische Urzeit, ja nicht einmal bis in die Epoche vor dem Abzug der Griechen nach Süden zurückreichen, da der H. den Griechen noch unbekannt war, während er damals im südlichen Rußland schon gebaut wurde. «Die Germanen erfuhren Einfluß südlicher Kultur etwa erst in den ersten Jahrhunderten unserer Zeitrechnung. Es gibt kein Lehnwort aus dem Griech. oder Latein., das die erste Lautverschiebung vollständig mitgemacht hätte. Wenn aber Verschiebung der Konsonanten in germ. hanapiz gegenüber κάνναβις vorliegt, so ist dies ein Beweis dafür, daß das Wort ein paar Jahrhunderte n. Chr. bei den Germanen bereits eingebürgert war» (KLUGE). — Der in alten Pflanzenglossaren auftretende Name für H. agrius (von ἄγριος = wild) deutet vielleicht darauf, daß H. an wüsten Plätzen ausgesät wurde und viel halbwild wuchs (FISCHER-BENZON). Auf die Verwendung der Faser zu Stricken deutet die Bezeichnung σχοινόστρωφον (= Stricke drehend, bei DIOSKURIDES, von σχοινίον und στρέφειν), die Namen Bästling, Bast, Bösling, Werch. Die einfachere Form canna, κάννη, im altindischen çaṇa, deutet vielleicht (GRASSMANN) auf Rohr, das auch zu Flechtwerken diente (KANNGIESSER), auf die sternförmige Fingerteilung der Blätter der Name ἀστήριον (bei DIOSKURIDES).

Stammpflanze und systemat. Stellung. Cannabis sativa L. (Spec. pl. ed. I, 1027) mit einigen Varietäten und Formen (s. unten). In Amerika wird von der typica eine var. americana unterschieden, in Algier eine als Kif.

Urticales — Moraceae — Cannaboideae (neben Humulus). Cannabis Tourn. hat nur eine Art.

Beschreibung der Stammpflanze. Der Hanf ist eine einjährige, krautige, diklin-diöcische (bisweilen monöcische) Pflanze mit straffem, aufrechtem, bis 3 m hohem und 5 cm dickem, undeutlich kantigem, kurz rauhhaarigem Stengel, der aber in der Kultur (z. B. bei der var. gigantea und der var. chinensis DEL. in China) doppelt so hoch, in der Poebene doppelt mannshoch werden kann, bei der var. pedemontanus aber nur 1,5 m hoch ist. Die Stengel enthalten in der Rinde zahlreiche Bastfasergruppen (s. Hanffaser, S. 254). Die Verzweigung ist bei der weiblichen Pflanze dichter als bei der männlichen (bei der var. pedemontana reich und abstehend). Die Blätter, unten dekussiert, oben spiralig angeordnet, sind gestielt, (3-) 5-, 7–9fach gefingert. Der Stiel besitzt oben eine seichte Regenrinne. Die sitzenden, rauhhaarigen Blättchen sind lanzettlich, beiderseits zugespitzt, scharf gesägt (DIOSKURIDES vergleicht sie mit denen der Esche), die pfriemlichen Nebenblätter fein behaart. Die lockeren männlichen Infloreszenzen sind nur unten laubig.

Fig. 179.

Cannabis sativa L.

1. Diagramm der weiblichen Infloreszenz. 2 Frucht von der Fläche, 3 Frucht von der Kante gesehn. 4 Keimling herauspräpariert. 5 Querschnitt durch die Frucht und den Samen.

[

Tschirch-Oesterle

, Atlas.]

Die achselständigen Partialinfloreszenzen der männlichen Pflanze sind Doppelrispen: die Hauptachse verkümmert, unter ihrer Spitze entspringen zwei gleichwertige Rispen. An der Spindel der letzteren entspringen in der Achsel von Deckblättern unten kleine Dichasien, oben Wickel (reichblütige Dichasien mit Wickeltendenz und stark gestreckter Sympodialachse). Am Ende der Hauptachse der Pflanze steht eine echte Rispe. Die kurzgestielten aktinomorphen Blüten besitzen ein 5 mm langes, grünliches, aus fünf lineal-lanzettlichen Blättchen bestehendes Perigon, fünf epipetale Stamina mit linealer, mit Längsspalt aufspringender Anthere und kurzem Filament. Pollen rundlich (vgl. S. 480). Ein Stempelrest fehlt. Die dichte buschige weibliche Infloreszenz ist bis fast zum Gipfel laubig.

Bei den achselständigen weiblichen Partialinfloreszenzen ist die Hauptachse entwickelt. Sie wird zu einem Laubtrieb (Fig. 179, Mi). Die beiden Vorblätter (D α u. β) werden zu Deckblättern der zwei weiblichen Blüten. Sie umhüllen diese in Form einer innen offenen, außen behaarten Scheide, die länger ist wie der Fruchtknoten. In den Laubblattachseln der Zweige zweiten Grades wiederholt sich dasselbe und so entsteht der buschige Wuchs, der die meist kräftigeren weiblichen Pflanzen von den locker beblätterten männlichen unterscheidet. Das aus zwei Blattanlagen hervorgehende Perigon umgibt die Basis des einfächerigen, sitzenden Fruchtknotens becherförmig eng. Der eiförmige zusammengedrückte Fruchtknoten enthält ein vom Scheitel der Blütenachse gebildetes (ZINGER), hängendes, anatropes Ovulum und trägt zwei lange fadenförmige, in papillöse Narben auslaufende Griffel, die nach der Befruchtung abfallen. Die gelblich-graue, platte, kahle Frucht ist ein Nüßchen, das von dem sich vergrößernden Deckblatt umhüllt ist. Die Mikropyle der Samenanlagen ist zur Zeit der Reife nicht mehr vorhanden. Der Pollenschlauch wächst durch das Gewebe der Fruchtknotenwand zum Nucellus (ZINGER). Die ganze Pflanze, besonders aber die weibliche Infloreszenz, besitzt einen starken narkotischen Geruch, der von Öldrüsen herrührt, die namentlich auf allen Blattorganen sitzen (s. Anatomie).

Blüht in Deutschland im Juli bis August.

Die ursprüngliche Heimat des Hanf ist wohl die Gegend am Caspisee. Er ist sicher wild noch jetzt südlich von diesem See, und bei Lenkoran, sowie bei Astarte (BUNGE). Häufig angetroffen wird er auch in Sibirien, am Irtysch südlich vom Baikalsee, in Dahurien (Gouvern. Irkutzk), im Ural, an der Wolga, in Persien, Altai, West-China, Kaschgar, Kaschmir und im Himalaya. Im Himalaya steigt der Hanf bis 3000 m. Er ist jetzt durch Kultur über die Länder der gemäßigten Zone beider Hemisphären verbreitet. Daß er am Missouri wild wachse (WHERREL) ist aber nicht richtig. Nach Afrika ist er ebenfalls eingeführt worden, denn LIVINGSTONE fand ihn im Gebiete des Congo und Sambesi.

Die physiologische Varietät indica (auch wohl als Art Cannabis indica LAM. unterschieden) weicht nur im Wuchs ab (sie ist kleiner) und in der viel reicheren Ausbildung der Drüsenhaare und demgemäß stärkerem, fast betäubendem Geruch; die Art des Sekretes ist aber wohl dieselbe wie bei unserem Hanf (WOOD). Sie liefert keine spinnbare Faser (s. Herb. cannabis). Die Ableitung der Cannabis sativa des Nordens von dem indischen Hanf (WIESNER) leuchtet mir nicht ein. Eher dürfte das Umgekehrte der Fall sein.

Lit. ENGLER, Moraceae in ENGLER-PRANTL, Pflanzenfam. — LUERSSEN, Mediz. pharm. Botan. II, 528. — EICHLER, Blütendiagr. — BUNGE, Bull. Soc. Bot. France 1860, 30. — LEDEBOUR, Flora rossica. — DE CANDOLLE, L’origine d. pl. cult. — HÜGEL, Kaschmir. 1840. — ROYLE, Illustr. of the bot. of the Himalayan mont. 1839 und Fibrous plants of India. Cultivation of hemp in India. — GARNIER, Exploration in Indo-Chine 1873. — ZINGER, Beitr. z. Kenntn. d. weibl. Blüten u. d. Infloresz. d. Cannabineen. Flora 85, 189.

Abbild.: BERG-SCHMIDT, Atlas 2. Aufl., t. 129 (dort die systemat. Lit.). — PABST-KÖHLER, Medizinalpfl. t. 13. — NEES VON ESENBECK, Plant. med. t. 102. — HAYNE, Arzneigew. t. 35. — REICHENBACH, Icon. fl. Germ. t. 655. — BENTLEY and TRIMEN, Medic. plant. t. 231. — RHEEDE, Hort. mal. t. 60 u. 61. — RUMPHIUS, Herb. Amb. V, t. 77.

Pathologie. Prof. ED. FISCHER teilt Folgendes über die pflanzlichen Schädlinge mit: Auf Stengeln und Blättern des Hanfes sind verschiedene Parasiten beobachtet, von denen die meisten nicht sehr erhebliche Schädigungen hervorrufen dürften. Wir erwähnen unter denselben Peronospora Cannabina OTTH., Dendrophoma Marconii CAV., Septoria Cannabis (LASCH) SACC., Phyllosticta Cannabis SPEG. Wichtiger ist die als Hanfkrebs beschriebene Erkrankung, welche durch eine Sclerotinia (Scl. Kauffmanniana TICHOMIROFF, nach DE BARY mit Scl. Sclerotiorum LIBERT übereinstimmend) hervorgerufen wird, deren Mycel den Stengel durchwuchert und an dessen Oberfläche sowie im Markraum Sklerotien bildet. Die sog. Brusonekrankheit des Hanfes, bei welcher am Stengel etwas vorspringende, weissgraue Flecken und ein Absterben des Gewebes bis zum Holzkörper beobachtet wird, ist nach V. PEGLION eine Bakteriose. Endlich leben auf Cannabis sativa die beiden phanerogamischen Parasiten Orobanche ramosa L. (Phelipaea ramosa C. A. MEYER) und Cuscuta europaea L.

Kultur und Handel. Der Hanf wird besonders zur Gewinnung seiner Faser, weniger wegen der Früchte und des aus ihnen gepreßten Öls, in Indien als narkotisches Genußmittel (zur Bereitung des Haschisch I, S. 1042) gebaut; in größerem Maßstabe in Rußland in den Gouvernements Smolensk, Kaluga, Tela, Orel, Kursk, Tschernigoff. Ferner wird Hanf angebaut in China, Ostindien (hier die var. indica), Persien, Österreich, Ungarn, Deutschland (Baden, Elsaß, Rheinlande), Nordamerika (hier auch in Form der var. americana) und Neu-Seeland. Er gedeiht ebenso in der Nähe des Polarkreises (Archangel) wie in Indien. Hanf findet sich bisweilen in den Gärten der Bauern und Fischer in Kleinkultur (Kampongkultur I, S. 48), die daraus die Faser gewinnen (FISCHER-BENZON). Der Hanf liebt im allgemeinen ein nicht zu nasses, warmes Klima und eine geschützte Lage. Er verlangt einen kräftigen, tiefgründigen Boden. Der Hanf reift in 13–14 Wochen und welkt nicht eher als bis die Früchte reif sind. Die Früchte fallen zur Reifezeit aus der Hülle. Man trocknet sie rasch an der Luft. Die Früchte werden in Mitteleuropa im August gesammelt.

In Amerika kennt man folgende Sorten von Cannabis sativa-Früchten: barren hemp, black seeded hemp, chinese hemp, common h., East India h., German h., Indian h., Imperial Kentucky h., Russian h., New Zealand h. Der Hanfsamen von C. s. var. americana heißt: American hemp, auch wohl (fälschlich) chinese h. (WHERRELL).

Im deutschen Handel ist Hanfsaat in Ballen von c. 100 kg.

Hamburg führte von Fr. Cannabis 1908: 1082800 kg, 1909: 592100 kg ein und 1908: 780300 kg, 1909: 342500 kg seewärts aus (TUNMANN). Deutschland importierte 1909: 77526 dz «Hanfsaat» besonders aus dem europ. Rußland und Österreich und exportierte 59188 dz, besonders nach Frankreich.

Lit. OPPENAU, Der Hanfbau im Elsaß, seine Geschichte u. Bedeutung. 1897. — O’SHAUGHNESSY, Bengal dispens. and Pharmac. 1841. — WATT, Dict. econom. prod. India. — Wherrell s. unten. — TUNMANN, Apoth. Zeit. 1911.

Beschreibung der Droge. Die nußartigen, einfächerigen, einsamigen Schließfrüchte, die je nach der Sorte etwas verschieden in Form, Größe, Glanz, Marmorierung und Aderung sind, und denen bisweilen noch bräunliche Reste des Deckblattes anhaften, sind c. 3–5 mm lang und c. 2 mm breit (die Früchte der var. gigantea sind größer, HARZ), oval, breit-eiförmig etwas zusammengedrückt, an den Kanten, besonders an der dem Würzelchen entsprechenden Seite, gekielt (Fig. 179) und hier bei der Keimung zweiklappig aufspringend. Das Gewicht einer Frucht beträgt c. 4 mg. Die dünne, harte, zerbrechliche, glatte und glänzende Schale ist grau, grünlichgrau, grünlichbraun oder graubraun, innen meist olivenbraun, durch ein zierliches, von der Basis aufsteigendes, besonders bei Betrachtung mit der Lupe deutliches Adernetz zarter Gefäßbündel gezeichnet (Fig. 179). Der an der Spitze der Frucht angewachsene, von einer zarten, grünlichen, neben der Spitze der Radicula eine braune Chalaza zeigenden Samenhaut bedeckte Same enthält reichlich Endosperm nur um die Radicula. Er ist aus einem camptotropen Ovulum hervorgegangen, daher ist der Embryo hakenförmig gekrümmt (Fig. 179, 4). Dieser besitzt breite, fleischige Cotyledonen und eine anliegende Radicula, deren Spitze gegen die Spitze der Frucht gerichtet ist. Zwischen den Cotyledonen liegt die kleine Plumula. Die Früchte schmecken ölig, süßlich, etwas schleimig, die Emulsion widerlich. Hohle oder zerbrochene (stets ranzige) Früchte sind zu beseitigen. Aufgesprungene keimen nur zu 54% (HARZ). Man bewahrt Hanffrüchte am besten in hölzernen Gefässen auf.

Lit. MUTH, Unters. über d. Früchte d. Hanf. Jahresb. d. Verein. d. Vertret. d. angew. Botanik 1906. — TSCHIRCH in Realenzyklop. — HARZ, Landwirtsch. Samenkunde.

Anatomie. Die Fruchtknotenwand ist haar- und drüsenfrei. Das Perigon trägt einige Öldrüsen, ganz besonders ist aber das große, in einen langen, lanzettlichen Zipfel auslaufende Deckblatt außer mit Cystolithenhaaren (wie die Laubblätter) über und über mit Öldrüsen besät (vgl. TSCHIRCH-OESTERLE, Anatom. Atlas), die beim indischen Hanf sehr dicht stehen, bisweilen mehr wie 16 Secernierungszellen enthalten und auf langen Stielen emporgehoben sind. Platzt die Cuticula der Drüsen, so verklebt das Sekret den ganzen weiblichen Blütenstand, was besonders beim indischen Hanf stattfindet.

Die Fruchtschale besteht aus zwei Schichten, einer weichen äußeren und einer harten inneren. Die äußere besteht aus vier Schichten: der Epidermis, einer Zone unregelmäßiger Zellen, eine Schicht brauner, quergestreckter und einer Reihe heller quadratischer Zellen. In der subepidermalen Zone verlaufen die zarten Bündel, die die Zeichnung der Frucht (s. oben u. Fig. 179) bedingen. Die Hartschicht der Fruchtschale besteht aus einer Reihe sehr eigenartiger Palissadensklereïden (Fig. 180, scl). Die grünliche Samenschale besteht aus zwei Schichten, einer äußeren einreihigen, die aus eigentümlichen langen, eine grünliche Substanz enthaltenden Schlauchzellen besteht und einer inneren breiten, stark obliterierten Nährschicht (Fig. 180 N).

Das aleuronreiche, der Samenschale anhaftende Endosperm ist gegen die Cotyledonen hin durch eine Quellschicht (TSCHIRCH) abgeschlossen (Fig. 180 Qu). Die subepidermale Schicht der Oberseite der Cotyledonen zeigt palissadenartige Streckung. Das Gewebe der Cotyledonen und der Radicula ist erfüllt mit in Ölplasma eingebetteten, Globoide und Kristalloide einschließenden, c. 4–8 mik. langen Aleuronkörnern. Die Angabe WHERRELLS, daß auch Stärkekörner in großer Menge vorkommen, beruht auf einen Irrtum. Jede Zelle enthält einen lappigen Zellkern.

Fig. 180.

Cannabis sativa

L.

Querschnitt durch die Fruchtschale (frs), Samenschale (ss), das Endosperm (End.) und die innere Schicht eines Cotyledon.

[

Tschirch-Oesterle

, Atlas.]

Lit. TSCHIRCH, Anatomie, Fig. 36, 148, 157, 533. — TSCHIRCH-OESTERLE, Anatom. Atlas (dort das anatom. Detail). — TSCHIRCH, Cannabis in Realenzyklop. d. Pharm. — WINTON, Anatom. d. Hanfsam., Zeitschr. d. Unters. d. Nahrungs- u. Genußm. 1904; auch Conn. Agric. Exp. Stat. Rep. 1903, 175. — COLLIN-PERROT, Les résidus industriels (p. 115 die Preßkuchen mit Abbild.). — MOELLER-WINTON, Mikroskop. d. Nahrungsm. und WINTON-MOELLER, Microscopy of vegetable foods (mit Abbild.). — HARZ, Landw. Samenkunde (mit ungenauen Abbild.). — MACCHIATI, Anat. del frutto e germinat. del seme della canapa Bull. Staz. agrar. di Modena 1889. — BENECKE, Mikrosk. Unters. d. Kraftfutterm. 1886. — COLLIN, Guide pratique 1893. — T. F. HANAUSEK, Nahrungs- u. Genußm. 1884. — BÖHMER in KÖNIGS Unters. landwirtsch. u. gewerbl. wichtig. Stoffe 1898.

Chemie. Eine ältere Analyse (BUCHHOLZ) gibt an, daß die Früchte enthalten in Prozenten: 19,1 Öl, 1,6 Harz, 1,6 Zucker und Extraktivstoff, 9 gummiges Extrakt, 24,7 lösliches Eiweiß, 5 Dextrin, 38,3 Faser. ANDERSON fand 22% Eiweiß, Phosphate 2,4%, übrige Asche 4%. Die lufttrockenen Früchte ergaben im Durchschnitt zahlreicher Analysen (BOUSSINGAULT, DIETRICH und KÖNIG, ANDERSON, SCHÄDLER) in Prozenten: 8,92 Wasser, 18,23 Stickstoffsubstanz, 32,58 (31,42–33,6) Fett, 21,06 stickstofffreie Extraktstoffe, 14,97 Rohfaser, 4,24 Asche — in der Trockensubstanz: 20,01 Stickstoffsubstanz und 35,77 Fett.

FRANKFURT fand (1894) in der Trockensubstanz in Prozenten: 18,63 Eiweiß (Myosin, Vitellin), 3,36 Nucleïn usw., 0,88 Lecithin, 30,92 Glyceride, 0,07 Cholesterin, 2,59 Rohrzucker (E. SCHULZE) und sonstige lösliche Kohlehydrate, 11,02 Pentosane, 0,68 organische Säuren (Citronensäure), 26,33 Rohfaser, 5,51 Asche (LEUCHTWEISS: 5%). Der wässrige Auszug der unzerkleinerten Früchte schmeckt süßlich und reduziert FEHLINGsche Lösung in der Kälte, durch Eisenchlorid wird er nicht gefärbt (FLÜCKIGER).

In der von 3,5–6,5% (2,2–7,39 WHERRELL) schwankenden Asche findet sich in %: 20,28 Kali, 23,64 Kalk, 36,46 Phosphorsäure, 11,9 Kieselsäure, 5,7 Magnesia, 1 Eisenoxyd, 0,78 Natron, 0,19 Schwefelsäure, 0,08 Chlor.

Ferner wurde in der Hanffrucht gefunden: Edestin (OSBORNE und CAMPBELL), krist. Globulin (RITTHAUSEN, OSBORNE), Anhydrooxymethylenphosphorsäure (?), als Ca-Mg-Salz = Phytin (?) (POSTERNAK), Trigonellin und Cholin (SCHULZE und FRANKFURT, MARINO ZUCCO, JAHNS), 3,36% Nucleïn, 0,88% Lecithin und die Enzyme: Emulsin (SIMON), Lipase (SIEGMUND), Protease (WILL).

In den Aleuronkörnern finden sich hauptsächlich Globuline. Die Kristalloide enthalten wenigstens zwei Globuline von verschiedener Löslichkeit, die Globoide neben Globulinen in anscheinend fester Bindung Ca, Mg und H3PO4 mit einem organischen Rest, die Grundsubstanz neben Globulinen wenig Albumosen (TSCHIRCH und KRITZLER).

Durch Pressung erhält man 15–30% Öl (und 70–85% «Hanfpreßkuchen»), durch Ätherextraktion bis 34,5% Öl (FLÜCKIGER); noch höhere Zahlen erhielten MUNCH (1866): 35,5% und WHERRELL (1897) mit Petroläther und Äther: 35,65%. Als Durchschnittsgehalt kann man 32% annehmen.

Das Hanföl, Oleum cannabis (huile de chanvre, de chènevis, hemp seed oil, olio di canape) zeigt die Elementarzusammensetzung C = 76,0, H = 11,3, O = 12,7, ist frisch gepreßt hellgrün bis grünlichgelb, wird aber bald braungelb und hat meist einen unangenehmen Geruch. Es enthält neben den Glyceriden der Stearin- und Palmitinsäure vorwiegend das Glycerid der Linolsäure (c. 70%) neben 15% Linolen- und Isolinolensäureglyceriden (vgl. S. 546). BAUER und HAZURA fanden darin eine eigentümliche Fettsäure: Hanfölsäure, C18H32O2, die aber wohl mit Linolsäure identisch ist (?). Nach LEWKOWITSCH fehlt Stearinsäure. Der Gehalt an freier Säure beträgt c. 5% (BAUER, HAZURA, GRÜSSNER), der Gehalt an unverseifbaren Bestandteilen (Phytosterin + Lecithin) beträgt 1,08%. Das spez. Gewicht ist = 0,925–0,931. Das Öl verdickt sich bei −15 und erstarrt bei −27°. Die Verseifungszahl beträgt 190–194,9, die Jodzahl ist sehr hoch: 140–166 (meist 148 bis 157), die Acetylzahl der Fettsäuren 7,5, die Sauerstoffabsorption, direkt bestimmt: 13,4%, die Temperaturerhöhung bei der MAUMENÉschen Probe beträgt 95–99° (ULZER und KLIMONT), Brechungsexponent in Oleorefraktometer +30 bis 37,5, der Entflammungspunkt liegt bei 250–265° (RAKUSIN) (weitere Konstanten bei LEWKOWITSCH a. a. O.). Das Öl wird rasch ranzig. Da die Fruchtschale stets Chlorophyll enthält und dieses in Öl löslich ist, so findet man diesen Farbstoff auch, wie die spektralanalytische Untersuchung lehrt (TSCHIRCH), im Öl. Das mit Äther ausgezogene Öl ist bräunlichgrün.

Die in 12–15 kg schweren Broten in den Handel gebrachten Hanfsamenpreßkuchen (pain de chènevis, tourteau de chanvre) enthalten c. 10% Wasser, 6–10,17% Öl, 21–31% Stickstoffsubstanz, 17,3–24,7% Faser und 7–8% Asche (CORNEVIN, GAROLA, DIETRICH und KÖNIG). Narkotische Bestandteile, etwa der Art wie sie die Blätter zeigen, enthält die Frucht nicht. Sie kann also nicht zu Berauschungszwecken (I, S. 1042) benutzt worden sein. Wohl aber zeigten die Preßkuchen bei Tieren abführende Eigenschaften.

Lit. BUCHOLZ, Arch. Pharm. (2) 78, 211. — ANDERSON, Journ. Agric. of the Highland Soc. 1855, 128 (Arch. Pharm. [2] 78, 211. Jahresber. d. Chem. 1855, 727). — LEUCHTWEISS, Lieb. Ann. 50 (1844), 417. — SIMON, Pogg. Ann. 43, 404. — KÖNIG, Nahrungs- u. Genußmittel (dort weitere Lit.). — SAMOGGIA, Staz. sperim. agr. ital. 31 (1898), 417. — FLÜCKIGER, Pharmakogn. — J. B. BOUSSINGAULT, D. Landwirtsch. in ihren Bezieh. z. Chemie 3, 202. — WILL, Ber. d. chem. Ges. 1875, 1570. — SCHÄDLER, Technol. d. Fette 1883. — FRANKFURT, Landw. Versuchsstat. 43 (1894), 145 u. 307. — SCHULZE und FRANKFURT, Zeitschr. phys. Chem. 20 (1895), 511. — LEWKOWITSCH, Chem. Technol. d. Öle usw. (dort die analyt. Liter.) — ULZER-KLIMONT, Chem. d. Fette. — WHERRELL, Bull. of pharmacy 1897, 340. — OSBORNE u. CAMPBELL, Journ. amer. chem. soc. 18 (1896), 609. — POSTERNAK, Compt. rend. 137 (1903), 202. — MARINO-ZUCCO, Gaz. chim. ital. 1895, 262. — SIEGMUND, Monatsh. f. Chem. 1890, 272. — BAUER u. HAZURA, Ebenda 1886, 216. — HAZURA, Ebenda 7, 637 u. 8, 147. — TSCHIRCH u. KRITZLER, Aleuronkörner. Ber. d. pharm. Ges. 1890, 246. — Lit. der Aschenanalysen des H. in WEHMER, Pflanzenstoffe. Analysen der Hanfsamenpreßkuchen in HARZ, Landwirtsch. Samenkunde, BÖHMER, Die Kraftfuttermittel und in DAMMERS Illustriert. Lexik.

Verwechslungen und Substitutionen. In Amerika fand WHERRELL als «Hanf» (hemp) bezeichnet folgende Sorten: Agrimony hemp: Eupatorium cannabinum, Ambareehemp (oder Deckarreeh.): Hibiscus cannabinus, Africanh.: Sanseveria guineensis, Bastardh.: Datisca cannabina, Bengalh. (Bombayh. brownh., Madrash., Sunnh.): Crotolaria juncea, Bowstringh.: Sanseveria zeylanica, Black indianh. (Canadianh.): Apocynum cannabinum und A. androsaemifolium, Jubbulporeh.: Crotolaria tenuifolia, Manilah.: Musa textilis, Nettleh.: Galeopsis Tetrahit, Rajinahalh.: Marsdenia tenacissima, Sisalh.: Agave sisalana, Waterh.: Acnida cannabina, White Indianh.: Asclepias incarnata, Wildh.: Ambrosia trifida. Die Herkunft von Chilianh. ist zweifelhaft. Diese Sorten sind vornehmlich Faserpflanzen.

Das Hanföl dient seinerseits vielfach (z. B. in Amerika) als Verfälschungsmittel des Leinöls. Die Hanfpreßkuchen werden mit allem möglichen, z. B. Salz, in Frankreich mit Tourteau de Pulghère oder de Pignon d’Inde (Jatropha Curcas) verfälscht (COLLIN). Letztere Beimengung ist gefährlich.

Lit. ORTA WHERRELL, Hemp seed and hemp seed oil. Bull. of pharm. 11 (1897), 340 (mit Abbild.).

Anwendung. Die Emulsion der Frucht (Emulsio seminis cannabis) dient als reizmilderndes Mittel besonders bei Blasenleiden, das Öl in der Tierheilkunde als Einreibung bei übermäßiger Milchsekretion, ferner zur Herstellung von Schmierseife, «grüner Seife», die hier, da das Öl grün ist, wirklich eine grüne Farbe hat. Aus dem Samenkern wird Phytin dargestellt, das aber ein Gemenge ist [Inosit-Phosphorsäure (?) und Glukuron-Phosphorsäure?]. Hanföl ist während der griechisch-katholischen Fastenzeit Hauptnahrungsmittel des russischen Volkes (HEHN). Der Hanf ist auch Volksheilmittel in Rußland (KOBERT, Studien I). Die Hanfsamenpreßkuchen werden, da sie schlecht schmecken und abführend wirken, nur wenig als Futtermittel, viel als Düngemittel und in sehr beträchtlichen Mengen (in Frankreich bis 150000 kg pro Jahr) zum Füttern der Fische benutzt (COLLIN). Die Hanffrüchte sind ein beliebtes Vogelfutter. In Nordwest-Europa werden sie geröstet und mit Salz zu Brot, Suppen usw. gegessen. In England dient Hanf als Liebesorakel, in Serbien die Blüte als Aphrodisiacum.

Lit. COLLIN-PERROT, Residus industr. — Phytin: LEVENE und NEUBERG, Biochem. Zeitschr. 1909, 399 u. 406.

Geschichte. Da die Heimat des H. in Asien sich befindet, ist es erklärlich, daß besonders die Skythen und die Chinesen sowie andere asiatische Völker von jeher die Hanfkultur betrieben, die Mittelmeerländer aber die Leinkultur (ENGLER). Die Heimat der Hanfkultur ist also wahrscheinlich im nordwestlichen oder zentralen Asien (vielleicht auch in Südrußland) zu suchen. DE CANDOLLE nimmt an, daß skythische Stämme den Hanf (um 1500 n. Chr. etwas vor dem trojanischen Kriege) von Centralasien und Rußland nach dem Westen brachten. Den Hanf kannten die alten Ägypter nicht, ebensowenig die Phönikier. Er fehlt auch im alten Testament (HEHN). Weder Hanfsamen noch die Faser sind im alten Ägypten nachzuweisen (BUSCHAN), auch nicht in den Schriften der Ägypter und Hebräer. Dagegen wird er schon in den ältesten Schriften Chinas (z. B. im Shuking 500 n. Chr.) erwähnt und das chinesische Wörterbuch Rha ya (I, S. 520) unterscheidet bereits den männlichen und weiblichen Hanf (BRETSCHNEIDER). Auch Pen ts’ao kang mu (I, S. 518) führt Hanfsamen auf und der Hanfkultur gedenkt das landwirtschaftliche Werk Tsʿi min yao shu (I, S, 522). In Nordindien wurde H. schon 800 bis 900 n. Chr. gebaut. Das sanskritische çaṇa bezieht sich wohl auf Cannabis, obwohl es auch Crotularia juncea bedeuten kann (L. von SCHROEDER bei WIESNER). In Atharvaveda wird çaṇa als Heilmittel, in Sûtras (600 n. Chr.) werden Stricke aus çaṇa erwähnt. H. findet sich auch in Sušrutas und Charakas und anderen indischen Werken. Auf iranisch-skythischem Boden ging angeblich der Hanfrausch dem Weinrausch vorher. Jedenfalls ist die Bekanntschaft mit dem Hanf bei den arischen Indogermanen sehr alt (sansc. bhan̄gâ = Hanf). Über die Benutzung der Fasern und der Frucht bei den Skythen berichtet HERODOT (vgl. I, S. 1042). Er erwähnt wilden und kultivierten H. in Syrien, HESYCHIUS Kleider aus H. MOSCHION gedenkt der Faser. Die Griechen kannten ihn zur Zeit des HERODOT nicht, auch THEOPHRAST erwähnt den H. nicht. Bei den Römern wird Hanf zuerst bei LUCILIUS (100 n. Chr.) erwähnt. Nach ATHENAEUS scheinen sich zur Zeit HIERO II. von Syracus Kulturen in Gallien befunden zu haben (HEHN). Erst DIOSKURIDES meint, daß die Frucht die Zeugung vernichte. Er erwähnt, daß die Faser die kräftigsten Stricke liefere. Das Kraut wurde im Altertum nicht benutzt (erst BERLU [I, S. 949] erwähnt es). Auch PLINIUS gedenkt des H. zur Verfertigung von Stricken. Er erwähnt, daß er im Frühling ziemlich dicht gesät und die Frucht zur Zeit des Herbstäquinoktiums geerntet und an der Sonne, dem Wind oder im Rauche getrocknet werde; der rosëische im Sabinergebiete erreiche die Höhe eines Baumes. Von einer medizinischen Anwendung der Früchte erfahren wir wenig. Bei SCRIBONIUS LARGUS fehlen sie; dagegen finden sie sich im Edikte des DIOCLETIAN (I, S. 569). Prähistorische Funde des Hanf fehlen in Mittel- und Westeuropa (HEER, SORDELLI). Das erste hanfene Gewebe stammt aus der Zeit der Völkerwanderung (BUSCHAN). Wahrscheinlich haben die Germanen den H. und seinen Namen sowie die Kultur etwa im IV. oder V. Jahrh. n. Chr. von demselben südosteuropäischen Volke erhalten, von dem direkt oder indirekt auch den Griechen die Sache und der Name übermittelt wurde (KLUGE). Die Germanen lernten also den Hanf erst zu HERODOTS Zeit kennen, die Skythen bauten ihn (HERODOT [IV, 74, 75]: «Der Hanf wächst wild und angebaut im Lande der Skythen») und er stammt wohl aus Bactrien und Sogdiana, den Caspischen und Aralgegenden, wo er noch jetzt in Üppigkeit wächst (KLUGE). Dagegen meint HOOPS, daß sich zum Flachs schon in vorgermanischer Zeit der Hanf gesellt haben müsse, da sein germanischer Name die erste Lautverschiebung mitgemacht hat. Jedenfalls wurde Hanf schon in vorrömischer Zeit in ganz Deutschland und auch in den nordischen Ländern kultiviert (HOOPS). Daß dies in altnordischer Zeit in Nordeuropa der Fall war, geht aus verschiedenen (bei HOOPS mitgeteilten) Dokumenten aus dem XIII. und XIV. Jahrh. hervor. Bischof OTTO von Bamberg fand H. bei den heidnischen Slaven in Pommern. Von den Angelsachsen wurde er auch in ihrer neuen Heimat angebaut. KARL DER GROSSE schrieb im Capitulare den Anbau von canava auf seinen Landgütern vor (SCHRADER, ich finde H. dort nicht). H. fehlt im St. Galler Klosterplan, im Hortulus und bei MACER FLORIDUS, was auf keine beträchtliche Kultur deutet. Daß Hanf im Mittelalter in Spanien gebaut wurde, geht aus IBN ALAWWÂMS landwirtschaftlichem Werke (I, S. 611) hervor. Als ein Bestandteil des berühmten Würzburger Rezeptes aus dem XIII. Jahrh. (I, S. 624) findet sich auch Canape sem. (hanofsamo). In den angelsächsischen Leechdoms (c. 1000) steht: «herba chamepitys baet is henep» und «deos wyrt be man cannane silfatica et obrum naman henep nemneb». Auch das Gothaer Arzneibuch (I, 680) gedenkt des hennep, das Züricher Arzneibuch aus dem XII. Jahrh. des hanifsâmin und die mittelenglischen Medizinbücher (I, S. 693) der hempe. Große medizinische Bedeutung scheinen die Hanffrüchte im Mittelalter und in der neueren Zeit aber nicht besessen zu haben, denn sie fehlen in vielen Taxen und Medikamentenlisten. Immerhin steht H. in der Alphita, bei SERAPION und BARTHOLOMAEUS (I, S. 644) und die Araber bedienten sich seiner, auch der Früchte, die IBN BAITHAR habb elsamanat nennt. Die erste Abbildung der Pflanze findet sich im Codex Constantinopol. des DIOSKURIDES (I, S. 554), eine weitere im Ortus sanitatis (vgl. I, Fig. 382). Schon RUMPHIUS gedenkt des Unterschieds zwischen indischem und europäischem H. Hanfsamen werden schon 1629 in der Plymouth Colony in Nordamerika erwähnt (Encycl. brit.). H. kam also frühzeitig nach Amerika. Im XVIII. Jahrh. wurde H. in Ägypten gebaut (FORSKAL). Hanffasern wurden in alten Papieren nachgewiesen (WIESNER), aber seltener als Leinfasern.

Lit. HEHN (SCHRADER und ENGLER), Kulturpflanzen. — SCHRADER, Reallexikon. — DE CANDOLLE, L’origine des plantes cultivées (dort weitere Lit.); auch PRODROMUS XVI. — BUSCHAN, Vorgeschichtl. Botan. — FISCHER-BENZON, Altdeutsche Gartenflora. — HOOPS, Waldbäume u. Kulturpflanzen. 1905. — WIESNER, Rohstoffe, II. Aufl. — BLÜMNER, Technol. u. Terminol. d. Gewerbe. 1875. — BRETSCHNEIDER, Chin. botanic. works 1870 u. Botanicon sinicon. — FLÜCKIGER, Pharmakogn.

Semen Papaveris und Oleum Papaveris.

Syn. Mohnsamen, Magsamen, Man, Mannkoppensaad, Mahnblom, Maon, Ölmagen, Schlafmohn — Pavot officinal, Ponceau (franz.) — papavero (ital.) — garden poppy, white p. (engl.) — maan kop, klaproos, heul (holl.) — valmun (fin.) — valmuë (norw.) — mak (ung.) — μήκων (griech.) — kashkásh, post (hind.) — ahiphena (sanscr.) — afiun, afiyun (arab., pers., ind.).

In der Schweiz: Kolben, Lichtschnuppen, Mageel, Magsaamen, Pavo, Röttiliöl, in Bünden: Machoca oder Matschöa. In Tirol: Echter Magen, Ölmagen, Magenpflanze (die Mohnköpfe: mog’n gugg’l, die Samen: mag’n, DALLA TORRE). — slav. mak — litauisch aguná — esthn. maggona — lett. maggons. — athd. mago — mthd. elmagen, magesaeme, magöl, swatz und wis magsam, magsat, magsamlyn, mahen, masem, masame, mauden, magnesam, moinsayd, ölmag, olimage, omahenmilch — mnd. maen, mahnmilch, manecop, mangksaat, — im Mittelalter: cadia, codion, opium — bei IBN BAITHAR: ḫašhāš — bei der HILDEGARD: Papaver. — Im Ortus: magsamen — bei MEGENBERG: magenkopf, magenkraut — bei CORDUS: mahn — bei BOCK: mägle, magle, mön, ölsamen. — Bei FUCHS: mon — bei LONICERUS: magen.

Etym. μήκων (dorisch μάκων) kehrt in mehreren slavischen und südkaukasischen Sprachen als mak wieder (die Griechen erhielten die Sache und das Wort aus der Gegend des Kaukasus) und dies ist auch in der Tiroler Bezeichnung Magen (s. oben) erhalten geblieben — mit einer angeblichen Verwendung als Magenmittel hat dies also nichts zu tun. Doch hieß μήκων auch die Blase des Tintenfisches, was auf die Form der Frucht deuten könnte. Einige denken auch an Beziehungen von μήκων zu sansc. mah (= groß), andere (PICTET) an Beziehungen zu lit. mēgmi (= schlafen), was GRASSMANN einleuchtender findet. Der Name Mohn, wohl mit μήκων urstammverwandt, läßt sich weit in die Urgeschichte Europas zurückverfolgen: altschwed. valmôghe neben mhd. mâhen, althd. mâgo — daraus lit. magone und estn. magun, altslav. makñ, altpr. moke. An die Samen erinnert der (Rendsburger) Name Hirsebräu, Magsamen u. and. Papaver ist nicht sicher erklärt. Man hat dies Wort als altes Participium mit — ver gebildet aufgefaßt: «Das Gedunsene» (lat. papula, pampinus) (SCHRADER). Andere meinen, es sei aus apio, capio, ἅπτω (= fassen) umgebildet (das p ist vorgesetzt), also soviel wie Faß, wegen der Tonnenform der Früchte (KANNGIESSER). Es hängt wohl kaum mit kelt. papa (= Brei) zusammen, obwohl Mohnbreie seit alter Zeit sehr beliebt waren (s. unten). Aus papaver entstand im agls. popaeg, dann popig und engl. poppy, sowie franz. pavot und ponceau (dies aber auch von puniceus, φοινίκεος = scharlachrot abgeleitet). Das holländische heul ist mit huile und Öl verwandt, das bei Mohnsamen oft vorkommt (s. oben).

Stammpflanze. Papaver somniferum L. Spec. pl. ed. I, 508 (P. opiiferum FORSK., P. officinale GMEL.) mit den Varietäten bzw. Varietätengruppen:

α setigerum (DC.) (auch als Art: P. setigerum DC.),

β nigrum (DC.) (ursprünglich α nigrum DC., P. somniferum GMEL., P. somnif. var. glabrum BOISS.),

γ album (DC.) (ursprünglich β album DC., P. officinale GMELIN) — weitere im Text. In den Gärten werden auch Sorten mit anders gefärbten und gefüllten Blüten kultiviert.

Wild ist der Gartenmohn bisher nirgends angetroffen worden. Als seine Urform gilt jetzt allgemein Papaver setigerum DC., welche Art sich noch jetzt im ganzen Mittelmeergebiet, besonders in Spanien, Algier, Corsica, Iles d’Hyères, Sizilien, Griechenland (Peloponnes) und Cypern findet (DE CANDOLLE, BOISSIER, Flor. orient. I, 116). In Nordfrankreich wird auch heute noch P. setigerum neben P. somniferum gebaut.

Systemat. Stellung. Papaveraceae — Papaveroideae — Papavereae. Sect. II. Mecones BERNH.

Beschreibung der Stammpflanze. Die einjährige, in allen Teilen milchende Pflanze bildet einen stielrunden, bereiften, 0,5–1,5 m hohen kahlen Stengel. Die grundständigen Blätter sind gestielt, oblong bis eioblong, ungleich-, eingeschnitten- oder buchtig-gezähnt, die oberen sitzend, mit tief-herzförmigem Grunde stengelumfassend, eiförmig, spitz, einfach oder doppelt gesägt, mit blaugrüner, bereifter Unterseite. Die Blätter (auch die Kelchblätter) sind bei var. nigrum und album kahl, bei var. setigerum laufen die Zähne des Blattes in Borsten aus und vereinzelte Borsten finden sich auch auf Blättern, Blütenstielen und dem Kelch; var. nigrum hat weniger tief gelappte Blätter. Blütenstiel abstehend behaart. Die Blüten stehen am Ende der Hauptachse oder von Seitenachsen. Die Knospe ist nickend. Die zwei c. 2 cm langen, meist kahlen und bläulich bereiften, in der Knospenlage dachziegelig deckenden Kelchblätter werden beim Aufblühen abgeworfen. Die in der Knospenlage geknitterte, nach dem Aufblühen leicht abfallende Blumenkrone erreicht einen Durchmesser von 10 cm und mehr. Sie ist bei γ album weiß mit violettem Grunde (bei einigen Spielarten auch rot oder lilafarben), bei β nigrum mehr oder weniger dunkel purpurn mit schwarz violettem Grunde. Die vier c. 4 cm breiten Kronenblätter sind fast kreisförmig, oben gestutzt oder ausgerandet mit äußerst kurzem Nagel. Die zahlreichen freien Staubfäden sind nach oben keulenförmig angeschwollen und besitzen dithekische Antheren mit ellipsoidischen Pollenkörnern. Der sehr kurz gestielte kugelige Fruchtknoten ist einfächerig und zeigt zahlreiche (7–20), in der Zahl mit den Narbenschenkeln übereinstimmende, 5–8 mm tief einspringende Samenleisten, an denen sehr zahlreiche anatrope Samenknospen sitzen. Die sitzende strahlenförmige Narbe zeigt zahlreiche (bei setigerum 7–8, bei nigrum 10–12) nach unten geschlagene Narbenlappen, in deren Längslinien die spaltenförmigen, den Samenleisten entsprechenden und über diesen liegenden Narbeneingänge sich finden. Die je nach der Varietät kugelige, eiförmige, eiförmig-längliche oder ellipsoidische kahle Frucht ist je nach den Varietäten und Spielarten sehr verschieden groß (von Haselnußgröße bis 7,5 cm und mehr), kurz gestielt (bei der var. apodocarpon HUSSENOT ungestielt), von der nun horizontal abstehenden viellappigen Narbe bekrönt, unter der sich die großen, mit Klappen sich öffnenden Poren finden, mit denen sie meist aufspringt (bisweilen bleibt sie aber auch geschlossen, z. B. bei var. album und apodocarpon). Bei var. album, stipitatum HUSS. und hortense HUSS. ist die Narbenscheibe am Rande gekerbt, bei var. apodocarpon HUSS. gegen den Rand hin abwärts gebogen, bei var. album mit freien, abstehenden, dicken, bei var. hortense mit dünnen, papierartig-häutigen Lappen. Sie ist durch die großen, in die Höhlung einspringenden, pergamentartigen, an den Ansatzstellen der Samen gefleckten Samenleisten unvollständig gefächert und zeigt außen die Verwachsungsnähte der Carpelle als seichte Längsfurchen. Der auf dem Fruchtknoten sichtbare Reif verschwindet später und die Frucht erscheint dann glatt und glänzend. Die sehr zahlreichen (bis 2000 — schon HOMER spricht in der Ilias von der καρπῶ βριθομένη, der mit Samen gefüllten Frucht —), kleinen nierenförmigen, grubig punktierten Samen, die bald weiß (var. album), bald bläulich-schwarz (var. nigrum) sind und einen gekrümmten, in Endosperm eingebetteten Keimling besitzen.

Blütezeit: Juni bis August.

Lit. PRANTL-KÜNDIG in ENGLER-PRANTL, Pflanzenfamilien. — DE CANDOLLE, Urspr. d. Kulturpfl. 1884. — RITTER, Erdkunde von Asien. — LUERSSEN, Mediz. pharm. Bot. — WILLKOMM ET LANGE, Prodr. flor. hisp. — BOISSIER, Flor. orient. I, 116. — LEDEBOUR, Flor. rossica. — Abbild.: BERG-SCHMIDT, Atlas II. Aufl., t. 116, PABST-KÖHLER, Medizinalpflanz. t. 37, NEES V. ESENBECK, Pl. med. t. 404 (album), HAYNE, Arzneigew. VI, t. 40, BENTLEY-TRIMEN, Med. plants t. 18, WOODVILLE t. 138.

Pathologie. Über die pflanzlichen Schädlinge berichtet Prof. ED. FISCHER: Einer der wichtigsten Parasiten der Papaver-Arten ist Peronospora arborescens DE BY., ein «falscher Mehltau», welcher auf den Blättern Verfärbungen hervorruft und namentlich an Keimpflanzen Schaden stiften kann. — Auf den Kapseln von Papaver somniferum werden angegeben: Alternaria Brassicae BERK. var. somniferi, Phoma morphaea SACC., Sphaerella morphaea SACC. Ein ausführliches Verzeichnis der Krankheiten der indischen Mohnpflanze in WATT, Dict. econom. prod.

Kultur. Der Mohn gedeiht überall, wo das Wintergetreide fortkommt. Er liebt aber warme und windstille Lage. Er wird ausschließlich als Sommerfrucht kultiviert und zeigt eine kurze Wachstumsdauer (120–140 Tage). Mohn wird jetzt auf der ganzen Erde — Zentraleuropa, Indien, Persien, China, Kleinasien, Afrika, Nordamerika, Australien (Neusüdwales) — gebaut (in Norwegen bis zum Polarkreise), besonders in Algier, Tunis und Ägypten wird viel Mohn kultiviert. Die Kultur erfolgt teils zur Samen- bzw. Ölgewinnung (in Europa, Afrika und Amerika) — zur Ölgewinnung besonders die Varietäten mit schwarzen Samen —, teils zur Opiumbereitung (Asien) — besonders die Varietäten mit weißen Samen. Die Praxis unterscheidet P. s. officinale, Schließmohn oder Dreschmohn (Pavot blanc et aveugle) mit geschlossen bleibenden und P. s. vulgare, Schütt- oder Schüttelmohn (Pavot oeillette, gris et noir) mit sich öffnenden Kapseln (s. oben), und die Samen nach der Farbe: weiße, rote, blaue, graue, braune, violette, schwarze (in Macedonien wurden 1883 nach der Farbe vier Sorten unterschieden). Offizinell sind nur die weißen Samen. Blauer Mohn soll ertragreicher sein, der weiße aber ein feineres Öl liefern (HART). Im Handel ist deutsches, levantinisches und ostindisches Öl von Pendschab, Bengalen und den Nordwestprovinzen.

In Indien gilt das Öl der Bengalpflanze für besser als das der Malvapflanze. Hamburg importierte 1908 61239 dz Mohnsamen, davon kamen aus Brit. Ostindien: 54564, von den russischen Häfen am Schwarz. u. Asowschen Meere 2885, aus Kleinasien 1524, von altpreußischen Ostseehäfen 1136; weniger als 1000 dz aus russischen Ostseehäfen, den Niederlanden, Persien, Ostafrika. British-Indien exportierte Poppy seeds nach England und engl. Besitzungen 1907/08: 965, 1908/09: 882 cwts, nach anderen Ländern 1907/08: 1256562, 1908/09: 790028 cwts. Die Vereinigten Staaten importierten 1909: 52086 bushels poppy seed und 6598 gallons poppy seed oil. Frankreich importierte 1908: 213349 Qint. Mohnsamen besonders aus Engl. Indien. Frankreich importiert jährlich für mehr als 6 Mill. Frs. Mohnsamen zur Ölgewinnung (COLLIN). Auch Mohnpreßkuchen bilden einen bedeutenden Handelsartikel.

Morphologie der Droge. Die Samen von P. s. β nigrum messen 0,88–1 mm, die von P. s. γ album 1,17–1,29–1,41 mm, die von P. s. α setigerum 0,66–0,97 mm (die des Pfahlbaumohn 0,75–1 mm, HARTWICH). Das Gewicht von 1000 Samen schwankt zwischen 0,239 g (indischer Mohn) und 0,531 g (österreichischer Mohn). Auf 1 kg kommen 1880000–4184100 Samen (HARZ). Die allein offizinellen weißen Samen sind 1–1,5 mm lang und 0,3–0,5 mg schwer, nierenförmig — das eine Ende etwas spitzer als das andere — und außen mit, besonders bei Betrachtung mit der Lupe, hervortretenden großen, polygonalen (meist sechseckigen) Netzleisten versehen, die bei den dunklen Sorten besonders deutlich sind. Diese Maschen des Samens bildete schon HOOKE (1667) ab. In der Einbuchtung des Samens sieht man als gelbliche Erhöhung den Rest des Funiculus und das Hilum, das mit der als gelber Fleck sichtbaren Chalaza durch eine kurze, das Bündel führende Raphe verbunden ist (A. MEYER). Durchschneidet man den Samen median-längs, so sieht man, eingebettet in Endosperm, den gekrümmten, im Querschnitt walzenrunden Keimling, zwischen dessen Cotyledonen eine kleine kegelige Plumula sichtbar ist. Die Radicula zeigt nach dem spitzen Ende des Samens. Sie ist etwa so dick als die beiden Cotyledonen. Mohnsamen ist geruchlos und schmeckt angenehm, milde-ölig. Man bewahrt ihn nicht über ein Jahr.

Fig. 181.

Papaver somniferum

L.

1 Same von außen. 2 Same längsdurchschnitten. 3 Same querdurchschnitten. 4 Querschnitt durch die Samenschale (1–6), das Endosperm (End) und den äußeren Teil des Cotyledons (Cot). 5 Succedane Flächenschnitte durch die Samenschale (die Zahlen 1–6 korrespondieren mit den gleichen Zahlen in Fig. 4). 6 Aleuronkörner.

[

Tschirch-Oesterle

Atlas.]

Anatomie. Die Samen gehen aus anatropen Ovulis hervor, die zwei Integumente mit sechs Zellschichten erkennen lassen. Aus diesen wird die sehr schmale Samenschale, deren Struktur erst nach Behandeln mit Salzsäure und Kalilauge sichtbar wird (MOELLER empfiehlt auch Färben mit Chlorzinkjod oder Safranin). Die äußerste Schicht, die die meisten Autoren für eine sehr schmale zusammengefallene Zellreihe halten, was sie auch wohl ist (und nicht eine verdickte Wand), erscheint in regelmäßigen Abständen kielartig emporgezogen. Diese Verwölbungen, in welche sich auch die darunter liegenden Schichten etwas vorstülpen, bilden die Leisten, welche in ihrer Vereinigung zu polyedrischen Maschen das für den Mohnsamen so charakteristische Maschennetz der Oberfläche erzeugen. An den Leisten sind die Epidermiszellen schmal, zwischen den Leisten in den Tälern der Maschen so groß wie ein Maschental (Fig. 181). Die Cuticula dieser Zellen enthält Calciumcarbonat ein- und aufgelagert. Die zweite Zellreihe besteht aus dünnwandigem, tafelförmigem Parenchym, das dicht erfüllt ist mit feinkörnigem Calciumoxalat, dem auch größere Kristalle beigemengt sind (MEYER), dann folgt die Hartschicht, die der schalenförmigen Einwölbung der Epidermis folgt und die aus gestreckten, flachen, stark verdickten Zellen besteht, deren Wände mit Chlorzinkjod violett werden. Die darauf folgenden drei Schichten (Fig. 181, 4. 4–6), die aus dem inneren Integumente hervorgehen, sind meist stark obliteriert. Nach Behandlung mit Kali unterscheidet man eine äußere Parenchymzellreihe, dann eine Reihe getüpfelter, gekrümmter, nicht sehr langer Zellen und zu innerst liegt eine Reihe dünnwandiger Zellen. In der inneren Krümmung des Samens ist die Samenschale dort, wo die Raphe verläuft, durch Vermehrung des Parenchyms dicker. Die Mikropyle ist noch sichtbar. Bei den blauen Mohnvarietäten findet sich in den inneren Schichten der Samenschale (Fig. 181, 4. 4 u. 5) ein brauner gelbstofffreier Farbstoff und die Membranen der Schicht 3 sind gelbbraun gefärbt. Die bläuliche Farbe kommt dadurch zu stande, daß über diesen braunen Schichten die Oxalatschicht liegt, deren mit Luft durchmischte Körnchen den Samen zudem bereift erscheinen lassen. Legt man den Samen in Salzsäure, so wird er braun (A. MEYER). Das breite, parenchymatische Endosperm führt zahlreiche in maschiges, den Zellkern einschließendes Ölplasma eingebettete, 1–7 (meist 4–5,5) mik große, Globoide und Kristalloide führende Aleuronkörner (Fig. 181, 6). Zu innerst liegt typisches Quellgewebe (Fig. 181, 4 Qu). Das Gewebe des Keimlings zeigt noch kaum eine Differenzierung, die Procambiumstränge sind undeutlich; die Zellen enthalten die gleichen Inhaltsstoffe wie das Endosperm, doch sind die Aleuronkörner kleiner. Stärke fehlt dem Samen.

Die Preßkuchen (und das Pulver) sind leicht an den Elementen der Samenschale zu erkennen, besonders an den großen Netzleisten, an der Faser- und Tüpfelzellenschicht.

Lit. (Fast jeder Autor beschreibt die Samenschale anders wie sein Vorgänger.) A. MEYER, Wissensch. Drogenkunde (mit Abbild.). — TSCHIRCH-OESTERLE, Anatom. Atlas (dort das anatom. Detail). — TSCHIRCH, Kleine Beitr. z. Pharmakobot. usw. 1897, Nr. 17. — VOGL, Nahrungs- u. Genußm. — MICHALOWSKI, Beitr. z. Anat. u. Entwicklungsgesch. von Papav. somnif. Diss. Breslau 1881. — HARZ, Landwirtsch. Samenk. — T. F. HANAUSEK in WIESNER Rohstoffe. — MOELLER-WINTON, Nahrungs- u. Genußm. und WINTON-MOELLER, Microscopy (mit Abbild.). — KARSTEN-OLTMANNS, Lehrb. d. Pharm. — BENECKE, Kraftfuttermittel. 1886. — BERG, Anatom. Atlas u. Pharmakogn. — BÖHMER, Ölkuchen in Dammers Lexikon. — GODFRIN, Etude histol. s. l. tégum. sémin. des Angiosp. Soc. d. sc. de Nancy 1880. — MEUNIER, Les tégum. sém. des Papaveracées in La Cellule 1891. — Die Preßkuchen in COLLIN-PERROT, Les résidus industr. (mit Abbild.).

Chemie. Die Samen enthalten nach älteren Analysen (SACC) 54,61% fettes Öl, 23,26% Schleim und pektinartige Substanz, 12,64% Eiweiß (Stickstoff 2–3%) und 5,93% Zellulose, 3–3,5% Wasser, 6–7,7% Asche. Im Durchschnitt enthält Mohnsamen in Prozenten: 8,15 Wasser, 19,53 Stickstoffsubstanz, 40,79 Fett, 18,72 stickstofffreie Extraktstoffe, 5,58 Rohfaser, 7,23 Asche (in der Trockensubstanz 21,26 Stickstoffsubstanz, 44,41 Fett) (BOUSSINGAULT, HOFFMANN, DIETRICH und KÖNIG, SCHÄDLER, HESSE, GREITHERR — bei KÖNIG). Nach neueren Angaben (MACH 1902 u. and.) in Prozenten: 47,4–51,4 Rohfett, 20–22,68 Rohproteïn (18,4–21,6 Eiweiß), 5,1–5,6 Rohfaser, 3–3,9 Pentosane, 1–1,8 Amide u. a., 9,5–10,5 stickstofffreie Extraktstoffe, 3,87–4,5 Wasser, 5,6–6,36 Asche. Ferner enthält der Same 0,25–0,94% Lecithin (SCHULZE und FRANKFURT), Diastase (in reifendem Samen, BRASSE), Emulsin (SIMON 1838) und Lipase (SIGMUND). Die Asche (6,04%, WOLFF) enthält 31,36 P2O5, 35,36 CaO, 13,62 K2O. In der Samenschale sind 8,7% Calciumoxalat enthalten (WEISS).

Die Angaben, daß Mohnsamen Morphin enthalte (nach MEURIN 0,003%, nach ACCARIE 0,06%), haben sich nicht bestätigt (SACC, MACH, CLAUTRIAU). HESSE gab (1865) Rhoeadin darin an.

Die Samen liefern bei der Pressung 40–50% fast geruchloses, angenehm schmeckendes, fettes Öl, Mohnöl, Oleum papaveris (huile d’oeillette, h. de pavot, h. blanche, poppy seed oil, olio di papavero, papaverzaadolie μεκωνέλαιον). Das kaltgepreßte Öl ist farblos oder goldgelb (weißes Mohnöl), das warmgepreßte dunkler (rotes Mohnöl). Es trocknet so gut wie Leinöl, ist aber wohlschmeckend. Die Elementarzusammensetzung ist: 76,5 bis 76,63 C, 11,2–11,63 H, 11,74–12,3 O (SACC). Nach 24stündigem Einlegen in halbkonzentriertes Kaliammoniak (HARTWICH-UHLMANNsche Mischung) treten im Tropfen kurze und lange, lockig gebogene Nadeln und reichlich Sphärite auf.

Es enthält von festen Fettsäuren 6,67% (TOLMAN und MUNSON), wahrscheinlich nur Palmitinsäure (LEWKOWITSCH) — nach älteren Angaben auch Stearinsäure. Die flüssigen Fettsäuren bestehen aus 5% Linolensäure, 65% Linolsäure und 30% Ölsäure (HAZURA und GRÜSSNER), Isolinolensäure ist fraglich; da die Fettsäuren aber nur sehr wenig oder kein Hexabromid geben, kann die Menge der Linolensäure nur sehr gering sein (LEWKOWITSCH). Das Unverseifbare (Phytosterin, F. 136–137°)beträgt c. 0,5%. Der Lecithingehalt des Rohfettes wird zu 13,27% (?) angegeben (STELLWAAG).

Das spez. Gewicht liegt zwischen 0,924 und 0,927 (ALLEN), der Erstarrungspunkt bei −17 bis −19° (GIRARD), der Schmelzpunkt bei −22°, die Verseifungszahl ist (189) 190,1–197,7 (DIETERICH, VALENTA, LEWKOWITSCH), die Jodzahl 132–136 (LEWKOWITSCH), 137,6–143,3 (DIETERICH), bei mit Petroläther aus dem Samen extrahierten Öl 153,48–157,52 (UTZ), die REICHARD-MEISSL-Zahl 0, die Hehnerzahl 95,38 (DIETZELL), 94,97 (bei ostindischen Ölen, CROSSLEY und LE SUEUR), die Maumenéprobe zeigt (74) 86–88,5°, der Brechungsexponent im Oleorefraktometer +23,5 bis +29° (JEAN), im Butterrefraktometer bei 15°: 78,1–78,4° (UTZ), bei 25°: 72–74,5. Die Verbrennungswärme des Mohnöls beträgt 9442 kal. (STOHMANN), 9397 g-kal. (SHERMAN). Der Entflammungspunkt liegt bei 250° (RAKUSIN).

Die freien Fettsäuren zeigen bei 100° ein spez. Gewicht = 0,888, ihr Erstarrungspunkt liegt bei 16,5°, ihr Schmelzpunkt bei 20–21° (DE NEGRI und FABRIS), die Neutralisationszahl ist 199, die Jodzahl 116,3–139 (die der festen Fettsäuren 149,6), die Acetylzahl 13,1, der Brechungsexponent 1,4506 (THÖRNER). Die technischen Mohnöle sind reich an freien Fettsäuren (bis 17,73%).

Die Zusammensetzung der Preßkuchen ergibt sich aus folgender Tabelle:

Weißer indischer Mohn Schwarzer Mohn

Artois Levant

DÉCUGIS GAROLA BOUSSINGAULT DÉCUGIS

Wasser 11,15 10,90 11,70 9,70

Fette 5,13 7,24 10,10 9,18

Stickstoffhalt. Substanz 34,50 38,12 37,80 35,38

Stickstofffreie Substanz 33,90 19,462 23,30 24,61

Cellulose

Asche 16,13 13,20 6,00 12,93

Die Preßkuchen des Mohn enthalten im Mittel 5,50–6% Stickstoff, 2,75–3,50% Phosphorsäure.

Lit. SACC, Ann. chim. phys. (3) 27 (1849) 473 (Jahresber. d. Pharm. 1849, 64). Journ. pr. Chem. 1850, 307. — ACCARIE, Journ. chim. méd. 1833, 431 (Jahresb. d. Chem. 4 [1835] 250). — MEURIN, Journ. d. pharm. 23 (1853), 339. — CLAUTRIAU, Ebenda 20 (1889), 161 und Bull. Soc. Belg. Mikr. 1894, 35. — WOLFF, Aschenanalysen I, 105 (Asche auch: WILDENSTEIN, Journ. pr. Chem. 54 [1851], 100). — MACH (Monograph.), Landw. Versuchsstat. 57 (1902), 419. — SCHULZE u. FRANKFURT, Landw. Versuchsstat. 1894, 307. — BRASSE, Compt. rend. 1884, 878. — SIMON, Poggend. Ann. 43 (1838), 404. — SIGMUND, Monatsh. f. Chem. 11 (1890), 272. — HANSEN, Fermente, Arbeit. Bot. Inst. Würzburg III, 252. — WEISS in MEYER, Drogenkunde. — Analysen bei KÖNIG, Nahrungs- u. Genußm., HARZ a. a. O. u. COLLIN-PERROT a. a. O.

Öl: OUDEMANS, Scheik. Verhand. 1858, II 180 (Jahresb. d. Chem. 1858, 304); Journ. d. pharm. 44 (1863), 362 (Jahresb. d. Pharm. 1863, 159). — MULDER, Journ. pr. Chem. 1865, 323 u. Chem. d. austrocknend. Öle 1867. — HAZURA u. FRIEDRICH, Monatsh. f. Chem. 1887, 247 (Jahresb. d. Pharm. 1887, 296). — HAZURA u. GRÜSSNER, Monatsh. f. Chem. 1888, 198. — HEFTER, Fette u. Öle II (1908) 100. — SCHAEDLER, Technol. d. Fette. — LEWKOWITSCH a. a. O. — TOLMAN u. MUNSON, Journ. amer. chem. soc. 1903, 690. — UTZ, Chem. Zeit. 1903, 1177 u. 1904, 257. — STELLWAAG, Landw. Versuchsstat. 37, 135.

Verfälschungen. Speisemohnöl wird mit Sesamöl (BAUDOUINsche Reaktion!) und Haselnußöl verschnitten, Malermohnöl oft durch Wallnußöl ersetzt, das aber 1,4 bis 1,9% Hexabromid (Mohnöl nichts davon) liefert und dadurch erkannt werden kann.

Anwendung. Mohnöl dient zu Speisezwecken, auch zur Verfälschung des Olivenöls und zur Herstellung weißer Malerfarben, mit Mastix und Japanwachs als «Wachsöl». Zur Schmierseifenfabrikation werden nur die schlechtesten Sorten verwendet. In der Pharmazie wird Mohnöl jetzt vielfach durch das bessere Sesamöl oder Erdnußöl ersetzt (D. A. V). In der Medizin dient Mohnsamen zu Emulsionen.

Die wohlschmeckenden Preßkuchen sind — schon allein wegen ihres Phosphorsäuregehaltes — ein vorzügliches Futtermittel. Sie zeigen keinerlei giftige Eigenschaften.

In der Niederlausitz (z. B. in Guben) wird ein aus Milch, Semmel und Mohnsamen bereitetes Gericht unter dem Namen «Mopielen» am Weihnachtsabend gegessen (TSCHIRCH). Die Sitte stammt wohl aus Schlesien, wo der Mohn mo genannt wird. Auch in Tirol findet sich als Festspeise ein Gericht aus Milch, Semmel, Honig und Mohnsamen (DALLA TORRE). Die noch heute übliche Sitte, Backwerk mit Mohnsamen (oder Lein- bzw. Sesamsamen) zu bestreuen, ist uralt (HEHN).

Geschichte. Die Heimat der Mohnkultur ist das nördliche Kleinasien. Die Griechen erhielten den Mohn von der Südküste des schwarzen Meeres. Dort lag die Stadt Sinope, die in der hesiodischen Theogonie noch ihren ursprünglichen Namen Mekone (= Mohnstadt) führte (HEHN), der auf reichliche Mohnkultur deutet. HOMER, THEOPHRAST, DIOSKURIDES gedenken des Mohn. DIOSKURIDES kennt auch schon die Varietät mit weißen Samen. Die Römer kannten, wie Funde in neolithischen Pfahlbauten zeigen, den wilden Mohn schon in vorgeschichtlicher Zeit, den Gartenmohn zur Zeit der Könige. Nach den Pfahlbaufunden bauten in der neolithischen Periode und der Bronzezeit die Bewohner Mitteleuropas eine zwischen Papaver somniferum und P. setigerum stehende Art (HEER), aus deren Samen sie Mohnkuchen buken und wohl auch bereits das Öl preßten und die man als Pfahlbaumohn bezeichnet hat. Sie steht P. setigerum noch ziemlich nahe (HARTWICH) und ist als eine Zwischenstufe zwischen beiden zu betrachten. «Der Mohn darf der ältest erreichbaren Schicht europäischer Kulturpflanzen zugeschrieben werden» (SCHRADER). Dem ägyptisch-semitischen Kulturkreise ist er ursprünglich fremd. Auf altägyptischen Monumenten fehlt der Mohn und Samen sind in Gräbern nicht gefunden worden. Erst PLINIUS (XX, 18) berichtet, daß sich die Ägypter des Mohnsaftes bedienten. Die Pflanze wird also wohl damals auch dort gebaut worden sein. Auch die Nachrichten aus Palästina über die Samen und ihr Öl (I, S. 489) stammen erst aus der römischen Zeit. PLINIUS, DIOSKURIDES, CELSUS (I, S. 587) und GALEN erwähnen bereits verschieden gefärbte Samen. GALEN hält sie für schwer verdaulich. Als Arzneimittel finden sie sich bereits bei SCRIBONIUS LARGUS (I, S. 578, Papaver silvat. und nigrum) und ALEXANDER TRALLIANUS (I, S. 592), als Handelsartikel im Edikt des DIOCLETIAN (I, S. 569). Der Anbau des Mohn ist in Deutschland alt, denn die ahd. Bezeichnung mâhan ging ins Vulgärlatein über (so mahunns, mahonns, manns in zahlreichen Glossen). Mohnkultur in Italien wird aber erst bei VIRGIL erwähnt. Den Gartenmohn brachten die Benediktiner nach Deutschland. Er steht im Capitulare KARLS, im St. Galler Klosterplan und bei MACER. Nach dem Kalender des HARIB (I, S. 612) soll Mohnsamen im August gesammelt werden. In der Alphita (I, S. 655) steht Papauer album (whatpopy), P. nigrum (blakpopy) und P. rubeum (redpopy), bei CORDUS: Papaver album, rubrum und nigrum, in der Frankfurter Liste (I, S. 812) Papaueris albi et nigri. Der Anbau des Mohn (zur Opiumgewinnung) reicht in Indien nicht weiter als bis ins XVI. Jahrh. zurück, doch finden sich Mohnsamen (khastila) schon im Glossar des SUVARNĀDIVARGA (I, S. 505). Die Mohnkapsel galt wegen der zahlreichen Samen schon den Hellenen als Symbol der Fruchtbarkeit. Man findet sie oft mit Ähren zusammen in der Hand der DEMETER, der Göttin des ehelichen Segens, aber auch sonst auf Münzen und anderen Bildwerken des Altertums (zahlreiche Abbildungen in LOCHNERS Mekonopaignion, Nürnberg 1718). Die Pflanze war der APHRODITE geweiht. Der Same wurde gegen den weißen Fluß benutzt (AIGREMONT). Mohnköpfe gab man auch HYPNOS, THANATOS und NYX in die Hand (GUBERNATIS). In Böhmen findet sich der Aberglaube, daß die Braut, der man Mohnkörner in den Schuh schüttet, unfruchtbar bleibt.

Lit. HEER, D. Pfl. d. Pfahlbauten. Neujahrsbl. d. Zürch. Naturf. Ges. 1866. — HARTWICH, Pap. somnif. u. dess. in d. Pfahlbaut. vorkomm. Reste. Apoth. Zeit. 1899. — NEUWEILER, D. prähist. Pflanzenreste Mitteleuropas. Zürich 1905. — FLÜCKIGER, Pharmakogn. — DE CANDOLLE, L’origine d. pl. cultiv. — GUBERNATIS, Mythologie des plantes.

Zu den trocknenden Ölen gehören ferner folgende Samenöle:

Perillaöl von Perilla ocymoides.

Tungöl (Holzöl), Ölfirnißbaumöl von Aleurites cordata.

Kekunaöl von Aleurites triloba.

Stillingiaöl, Talgsamenöl von Stillingia sebifera.

Weiß-Acacienöl von Robinia Pseudacacia.

Cedernnußöl von Pinus Cembra.

Walnußöl von Juglans regia.

Safloröl von Carthamus tinctorius.

Echinopsöl von Echinops Ritro.

Amooraöl von Amoora Rohituka.

Spargelsamenöl von Asparagus offic.

Nigeröl von Guizotia oleifera.

Sonnenblumenöl von Helianthus annuus.

Gelbacacienöl von Caragana arborescens.

Argemoneöl von Argemone mexicana.

Kiefern-, Fichten-, und Tannensamenöl.

Madiaöl von Madia sativa.

Erdbeeröl von Fragaria vesca.

Rotrepsöl, Nachtviolenöl von Hesperis matronalis.

Bilsenkrautsamenöl von Hyoscyamus niger.

Celosiaöl von Celosia cristata.

Indisches Lorbeeröl von Laurus indica.

Resedasamenöl von Reseda luteola.

2. Halbtrocknende Öle.

Die halbtrocknenden Öle bilden den Übergang von den trocknenden zu den nichttrocknenden Ölen. Ihre Jodzahlen liegen zwischen denen beider Gruppen. Linolensäure fehlt in ihnen, sie enthalten aber Linolsäure. Die Gruppe der Baumwollsamenöle zeigt trocknende Eigenschaften mehr als die Rübölgruppe.

Semen Gossypii und Oleum Gossypii.

Die Stammpflanze der Baumwollsamen ist oben S. 230, die Morphologie und Anatomie S. 238 beschrieben. Dort auch die Geschichte.

Bis 1852 wurde der Baumwollsamen meist weggeworfen (vgl. S. 245). Seit dieser Zeit wird das Öl gepreßt und der Preßkuchen als Futter- und Düngungsmittel benutzt.

Besonders ist amerikanische und ägyptische Baumwollsaat im Handel, dann auch ostindische (Bombay), levantinische (Smyrna, Mersine, Alexandrette).

British Indien exportierte cotonseeds 1907/08: 3683634, 1908/09: 2777844 cwts nach England und engl. Besitzungen und 1907/08: 566238, 1908/09: 905528 cwts nach anderen Ländern. Die Vereinigten Staaten exportierten 1909: 51626741 pounds cotton seed, 51087329 gallons Cotton oil und 1233750327 pounds cotton seed oil cake. In Nordamerika besteht eine Cotton-Oil-Compagny. 1894 gab es dort schon 252 Cotton-Oil-Fabriken. Ägypten exportierte schon 1897: 7½ Mill. hl Baumwollsamen. Frankreich führte 1908 355633 Quint. Baumwollsamen ein, vorwiegend aus Ägypten (298520 Qint), sehr viel weniger aus Engl. Indien, der Türkei, Haïti, den Ver. Staaten, Portorico, Columbien und Algier. Frankreich importierte 1908: 516580 Quintalm. Baumwollsamenöl, das meiste aus den Vereinigten Staaten. In großem Stil wird in Frankreich Olivenöl mit Cottonoil vermischt und als «Olivenöl» exportiert.

Baumwollsamen enthalten 44,4–60% Kern und 40–54,8% (nach anderen 66–71%) Hülsen. In den Samen ist 18,67 (Levante, Mersine) bis 23,93% (ägyptische), im Durchschnitt c. 20% Öl enthalten, in den Kernen 37,41 (ägyptische) bis 39,28% (Bombay) Öl (LEWKOWITSCH); die beim Schälen abfallenden «Hülsen» enthalten davon kaum 1–3%. Das Öl wird sowohl aus geschälten wie ungeschälten Samen gepreßt.

In Ergänzung der Angaben auf S. 245 sei über die Zusammensetzung der Samen noch folgendes angegeben. Sie enthalten ungeschält im Mittel in Prozenten: 11,1 Wasser, 19,69 Stickstoffsubstanz, 20,86 Fett, 23,43 stickstofffreie Extraktstoffe, 21,1 Rohfaser, 3,8 Asche (WAGNER-CLEMENT 1908). Der geschälte Samen enthält im Mittel in Prozenten: 7,28 Wasser, 29,55 stickstoffhaltige Substanz, 27,23 Fett, 24,07 stickstofffreie Extraktivstoffe, 4,62 Rohfaser, 7,25 Asche, doch schwanken die Zahlen je nach Herkunft der Samen. Vom Fett sind z. B. auch nur 17% beobachtet, von stickstofffreien Extraktstoffen 24,5–32,5 (noch größere Schwankungen bei BRYDE). Die Samenkerne enthalten 5,49% Pentosane (SKINNER). Ferner sind nachgewiesen: 42,3% des Globulins Edestin (OSBORNE und VOORHEES) und 44,3 bzw. 11,4% zweier weiterer Globuline, Proteose (OSBORNE), Nucleïn, Betain, Cholin, Lecithin, Melitriose (Raffinose, Melitose, Gossypose), Stärke (? SACC), Zucker, Wachs, Dextrin. In der 3–6% betragenden Asche ist viel MgO (16–20%), P2O5 (26–31%) und K2O (27–37%), auch etwas Titan (0,02%, WAIT) gefunden worden.

Die ägyptischen und Bombay-Samen gelten als die ölreichsten. Sie werden vorwiegend in Deutschland, England, Frankreich und Italien verarbeitet. Der Samen wird vor dem Pressen meist geschält.

Das Baumwollsaatöl, Oleum Gossypii (huile de coton, cotton oil, olio di cotone, katoenolie, βαμβακέλαιον) enthält je nach dem bei der Fabrikation angewendeten Drucke mehr oder weniger flüssige Glyceride. Die Elementarzusammensetzung ist C=76,30 bis 76,50, H=11,33–11,73, O=12,17–12,39 (KÖNIG). Von festen Fettsäuren, die 22,3–32,6% des Öls betragen (TWITSCHELL, FARNSTEINER, TOLMAN, MUNSON), sind besonders Palmitinsäure, weniger (c. 3,3%) Stearinsäure nachgewiesen, von flüssiger Linolsäure (18,45–21% der Fettsäuren, LEWKOWITSCH) und Ölsäure (c. 76,55% der flüssigen Fettsäuren). Da kein Hexabromid entsteht, muß Linolensäure fehlen. Dagegen scheinen 3,6% Oxyfettsäuren (FAHRION), aber keine Arachinsäure vorhanden zu sein. Die Cottonölsäure (PAPASOGLI) ist zweifelhaft, ebenso der mit Wasserdampf flüchtige, schwefelhaltige Körper DUPONTS.

Das spez. Gewicht ist 0,922–0,928. Gehalt an freien Fettsäuren (auf Ölsäure berechnet) 0,15–0,5%, Unverseifbares (bes. Phytosterin, F. 136–137°) 0,73–1,64%, Erstarrungspunkt 0 bis −1°, Refraktometerzahl (im ZEISS-Butterrefraktometer bei 25°): 67,6–69,4, Verseifungszahl 191–198, Jodzahl 102–111, Temperaturerhöhung bei der Maumenéprobe 67–84°. Die Fettsäuren zeigen einen Erstarrungspunkt von 34,9–35,1 und einen Schmelzpunkt von 27–30° (beides relativ hoch!) und eine Acetylzahl von 16,6. Bei der Elaidinprobe wird das Öl dickflüssig oder butterartig. Der leicht erstarrende Teil (das Öl soll 70% Palmitin enthalten) wird als Baumwollstearin oder Cottonmargarin bezeichnet, der flüssigbleibende wird in erster Linie als Speiseöl benutzt. Die Verbrennungswärme des Baumwollsamenöls beträgt bei konstantem Volumen 9390–9401, bei konstantem Druck 9405–9416 g-cal. (SHERMAN und SNELL). Im Öl werden auch ein Aldehyd (?), eine schwefelhaltige Substanz (? s. oben) angegeben.

Das Öl wird in ungeheueren Quantitäten als Speiseöl und in der Margarinefabrikation, die geringeren Sorten auch in der Seifenfabrikation, verbraucht und dient auch zur Verfälschung des Olivenöls, des Schweineschmalzes und anderer Speiseöle und Fette.

Der Nachweis von Baumwollsamenöl in diesen Fetten und Ölen ist daher «eine der wichtigsten Aufgaben der Fettanalyse» (LEWKOWITSCH). Die wichtigste Reaktion ist die HALPHENsche (Erhitzen des in Amylalkohol gelösten Öls mit Schwefel und Schwefelkohlenstoff im Wasserbad — es tritt Rotfärbung ein). Die Reaktion bleibt aus, wenn das Öl zuvor auf 150–250° erhitzt wurde und tritt auch ein an Fett von Tieren, die mit Baumwollpreßkuchen gefüttert wurden. — Dann die auch an erhitztem Öl eintretende Probe mit Salpetersäure (spez. Gewicht 1,375), wobei nach längerem Stehen Braunfärbung eintritt. Die BECHIsche Silbernitratprobe ist unzuverlässig.

Die Zusammensetzung des Baumwollsamenpreßkuchen ergibt sich aus folgender Tabelle:

geschält roh

GAROLA VÖLCKER GAROLA DÉCUGIS

Wasser 7,78 9,28 12,44 9,30

Fette 12,87 11,05 5,86 6,10

Stickstoffhalt. Substanzen 47,81 41,12 28,00 24,10

Stickstofffreie Substanzen 20,84 22,50 40,64 54,50

Cellulose 3,80 8,14

Asche 6,90 8,05 4,92 5,96

Vgl. auch S. 245. Da die Preßkuchen nicht ganz ungefährlich sind, dürfen sie nur bei ausgewachsenen Tieren mit Vorsicht in kleinen Partien verfüttert werden.

In China werden seit Jahrhunderten aus Baumwollsamen Futterkuchen hergestellt.

In Nordamerika wird der Samen noch jetzt vielfach nur als Düngemittel benutzt.

Lit. WAGNER u. CLEMENT, Zeitschr. Unters. Nahr.- u. Genußm. 16 u. 17. — HEFTER, Fette u. Öle. 1908. — MATTHES und HEINTZ, Arch. Pharm. 1909, 161. — LEWKOWITSCH a. a. O. — Weitere Liter. in WEHMER, Pflanzenstoffe. — KÖNIG, Nahrungsm. (dort [B. I, S. 615] d. Liter.). — BÖMER, Zeitschr. Nahr.- u. Genußm. 1901, 872. — VÖLCKER, The analyst. 1903. COLLIN-PERROT, Resid. industr. — SKINNER, Exp. Stat. Rec. 1902. — BRYDE Ebenda. — WOLFF, Aschenanalysen. — OSBORNE und VOORHEES. Journ. am. chem. soc. 1894, 778. — FAHRION, Zeitschr. ang. Chem. 1892, 172. — PAPASOGLI, Publ. del labor. chim. d. gabelle 1893, 90. — DUPONT, Bull. soc. chim. 1895, 696. — Über Cottonölmargarin vgl. DE NEGRI u. FABRIS, Zeitschr. analyt. Chem. 1894, 563 u. HART, Chem. Zeit. 1893, 1520. — Über die Substanz, die die Halphenreaktion bedingt, vgl. SOLTSIEN, Zeitschr. öffentl. Chem. 1899, 306, CHARABOT und MARSH, Bull. Soc. chim. 1899, 552, RAIKOW, Chem. Zeit. 1899, 760 u. 892; 1900, 562 u. 583; 1902, 10, GILL und DENISON, Journ. am. chem. soc. 1902, 397. — ROSENTHALER Zeitschr. Nahr. u. Genußm. 1910, 453.

Semen Sesami und Oleum Sesami.

Syn. Sesamsamen, Kuntschuksamen, — sésame, jugoline, benné (franz.) — sesame (engl.) — sorgelin (span.) — gergelim (port.) — sesamo, giuggiolena (ital.) — simsim (arab.) — til, gingil, gingelin, gergelim (hindost.) — salid (abyss.) — moa, chima (chines.) — koba (japan.) — kundschut (buchar., pers., türk.) — in Westafrika: bennyseed, in Ostafrika (kisuaheli): mfuta, im malaiischen Archipel: widjen bidjen (wohl aus bidji = Same) — lenga (mak.), ringa (biman.), watu (sund.).

Etym. Das Wort Sesam ist uralt. Es findet sich schon im Babylonischen. šam šamni (= Pflanze des Öls), ging als Lehnwort ins Ägyptische šmšmt über (vgl. I, S. 467), dann ins Koptische šemsêm, ins Griechische σήσαμον (bei den späteren Griechen: σησαμάτον, σησάμινον, σέμσεμ; bei den Neugriechen σησάμι oder σουσάμι) und das Lateinische sesamum. Es findet sich auch im Aramäischen und Syrischen (schuschᵉmā;, šûmšemâ) und Arabischen (sâsim, simsim). Das indische Gingeli ist aus dem arabischen chutchulân umgebildet. Davon abgeleitet: Bei BARTHEMA (1510): zerzalino; bei CASTANHEDA (1552) und GOUVEA (1602): gergelim; bei FREDERICKE (1599): zezeline; bei MOCQUET (1610): gerselin; bei THEVENOT (1661): telselin. — Til, tila ist das Sanskritwort für Sesam. Benné ist westafrikanischen Ursprungs und steht vielleicht zu ben (= Moringa) in Beziehung (?).

Stammpflanze und systemat. Stellung. Sesamum indicum DC., zusammengezogen aus Sesamum indicum L., Spec. pl. ed. I, p. 634 und S. orientale L., ebenda (S. luteum KETZ., S. oleiferum MOENCH) mit vielen Kulturvarietäten bzw. Formen. DE CANDOLLE nimmt zwei Rassen, eine mit schwarzen, eine mit weißen Samen und mehrere nach der Form der Blätter unterschiedene Varietäten an. Er unterscheidet von seinem S. indicum die Varietäten: α grandidentatum (S. indicum L.), β subdentatum (S. indicum Sims.) und γ subindivisum (S. orientale L.).

Pedaliaceen — Pedalieae (Sesamum) Sect. Sesamotypus BENTH et HOOK. fil.

Beschreibung der Stammpflanze. Die bis 1 m hohe einjährige, dem Fingerhut äußerlich ähnliche Pflanze hat einen vierkantigen, nur oben kurz-rauhhaarigen Stengel und unten gegenständige, gestielte, eiförmige, 3–5lappige, grob- und unregelmäßig gezähnte, oben alternierende, fast sitzende, lanzettliche, meist ganzrandige Blätter. Die großen Blüten entspringen einzeln (die beiden Seitenblüten der Cyma sind abortiert) in den Achseln der oberen Blätter. Der außen behaarte Kelch ist bis fast zum Grunde geteilt, mit vier schmal lanzettlichen, spitzen Blättern. Die weiße (oder rote) Blumenkrone zygomorph, trichterförmig erweitert, am Grunde rückwärts schwach höckerig, weit aus dem Kelche herausragend, bis 35 mm lang, mit fünf Lappen, von denen die drei vorderen, die die Unterlippe bilden, größer sind als die zwei hinteren. Von den vier Staubfäden sind zwei länger. Sie tragen eine längliche Anthere, die mit einer Längsspalte aufspringt und am Connectiv eine Drüse. Das fünfte, hintere Stamen ist als pfriemliches Staminodium entwickelt. Das Gynaeceum trägt einen Griffel mit zwei lanzettlichen Narbenlappen und ruht auf einem niedrigen drüsigen Diskus. Es besteht aus zwei Carpellen, die unten durch falsche Scheidewände in je zwei Kammern geteilt sind. Die Frucht ist daher unten vier-, oben einfächerig. Die zahlreichen Ovula sitzen an zentral-winkelständigen Placenten. Die Frucht ist eine hellbraune, bis 35 mm lange, bis 7 mm breite, in eine ziemlich lange Spitze auslaufende, mit vier Längsfurchen versehene Kapsel, die sich bei der Reife bis fast zum Grunde dadurch aufspaltet, daß sich die falschen Scheidewände in zwei Platten trennen.

Abbild.: STAPF in Engler-Prantl, Pflanzenfamilien IV, 3b, 263. — VOGTHERR-KÖHLER, Medizinalpfl. Ergänzungsb. t. 58 (dort die weitere botan. Literatur). — BENTLEY-TRIMEN, Med. plant. t. 198. — WIGHT, Illust. Ind. Bot. t. 163. — Bot. Mag. t. 1688. — Älteste Abbild. CAMERARIUS, Hortus medicus —, RUMPHIUS, Herb. amb. t. 76 und RHEEDE, Hort. Mal. IX, 54, 55.

Pathologie. Über die pflanzlichen Schädlinge berichtet Prof. ED. FISCHER: MALKOFF hat in Bulgarien auf Sesamum eine mit Auftreten von Bakterien (er nennt Bacillus Sesami und Pseudomonas Sesami) verbundene Krankheit beobachtet, bei der auf den Blättern Flecken auftreten, die Stengel schwarz werden und schließlich vertrocknen. — In anderen Fällen (so in Turkestan, in Indien) wurde ein Absterben von Sesampflanzen beobachtet, das sehr wahrscheinlich durch Neocosmospora vasinfecta E. SMITH hervorgerufen wird, einen Pilz, der auch eine Krankheit der Baumwollpflanzen (s. dort) verursacht. (A. DE JACZEWSKI, Über das Vorkommen von Neocosmospora vasinfecta E. SMITH auf Sesamum orientale. Annales Mycologici I 1903, p. 31). Sesam hat von tierischen Feinden wenig zu leiden.

Kultur und Handel. Sesamum indicum wird in den Tropen und Subtropen beider Hemisphären gebaut, vornehmlich in Vorder- und Hinterindien (Siam), Himalaya, Afghanistan, Persien, Arabien, Rußland, China, Japan, Formosa, Java, Kleinasien (Hafen: Smyrna), Arabien, Palästina (Hafen: Jaffa), Ägypten, Griechenland, Sizilien (bei Syracus und im Süden), Malta, Gozo, Algier, West- und Ostafrika (Natal, Sansibar, Madagaskar, Mossambik, Senegal, Lagos) und den wärmeren Gebieten Nord- und Südamerikas (Brasilien, Westindien, Curaçao). Hauptproduktionsgebiet ist Vorderindien, das viel Sesam verbraucht und noch mehr exportiert. Dort sind ungeheuere Flächen mit Sesam bebaut. In der Präsidentschaft Madras allein 400000 ha. Die Pflanze verlangt eine möglichst gleichmäßige Temperatur und mindestens drei Monate gleichmäßige Wärme, sowie trockenen, kalkhaltigen, lehmigen, stickstoffreichen Sandboden. Man sät in Indien die schwarze Varietät im März, die weiße im Juni; die erste reift im Mai, die andere im August. Die Frucht wird ausgedroschen. Bisweilen werden, da die Vegetationszeit nur drei Monate beträgt, zwei Ernten im Jahr erzielt.

Im Handel unterscheidet man besonders indische und Levantiner Samen (letztere von der Form Orientale), sowie weißen, gelben, braunen und schwarzen oder gemischtfarbigen Sesam. Selbst dieselbe Varietät produziert Samen verschiedener Farbe. Im allgemeinen zeigen die Samen von S. indicum weiße, gelbliche oder bräunliche, die von S. orientale schwarzbraune bis violettschwarze Farbe (HARZ). In Indien heißt der hellgelbe safed til, der schwarze kala til. Der schwarze produziert mehr Samen, der weiße das feinste Öl.

Gleichmäßig gelblich-weiß ist der Levantiner Kurrachée und Sansibar-Sesam, mit grauen Samen gemischt der Bombay-Sesam, braun der ägyptische und Smyrna-Sesam, schwarz der indische.

Deutschland importierte 1909: 779401 dz Sesamsamen besonders aus China und Brit. Indien (zusammen über 700000 dz), dann aus Portugies. Ostafrika, Nied. Indien, der asiat. Türkei, Japan und Brit. Westafrika. Frankreich importierte 1908: 554036 Quint. Sesamsamen. Davon kam das meiste, etwa zu gleichen Teilen, aus China und Engl. Indien, kleinere Mengen aus der Türkei, noch weniger aus Niederl. Indien, Westafrika, Indochina. Marseille ist ein wichtiger Sesamimporthafen. Dann auch Triest. British Indien exportierte Sesamsamen 1904/05: 65532, 1908/09: 17977 cwts nach England und engl. Besitzungen und 1904/05: 2451225, 1908/09: 1639315 cwts nach anderen Ländern. Von Sesamöl 1908/09: 104306 cwts nach England usw. und 69904 cwts nach anderen Ländern. Siam exportiert etwa 4 Mill. kg Samen. China verschiffte aus den Vertragshäfen 1897: 44899 piculs, Ostafrika für über 200000 M. Die Vereinigten Staaten importierten 1909: 1274032 pounds Sesamöl.

Lit. SEMLER, Trop. Agrikult. — WATT, Dict. econom. prod. — FLÜCKIGER-HANBURY, Pharmacogr. — WARBURG, Sesamkultur in unser. Kol. Zeitschr. trop. Landwirtsch. 1898. — THOMS, Sesamsaat aus Togo. Tropenpfl. 1898.

Morphologie der Droge. Die Samen sind 1,5–4, meist c. 3 mm lang, c. 1 bis 2 mm breit und 1 mm dick, je nach der Sorte gelblich-weiß, rötlich oder braun bis schwarz, verkehrt eiförmig, etwas zugespitzt, flachgedrückt, spatelförmig. An den vier Kanten laufen vier mit der Lupe gut sichtbare, schmale Rippen. Dadurch erscheint der Same im Querschnitt undeutlich vierkantig. Die flachen Breitseiten sind infolge eines undeutlichen Netzwerkes feingrubig runzlig. In der Mitte der einen flachen Seite verläuft die Raphe. Das Endosperm ist etwa halb so dick wie ein Cotyledon. Die ölreichen Cotyledonen sind flach, zwischen ihnen liegt der Keimling. Der Geschmack ist angenehm milde-ölig.

Anatomie. Die Samenschale zeigt zwei Schichten. Die äußere besteht aus beim trockenen Samen zusammengefallenen, nach dem Aufweichen palissadenartig gestreckten, dünnwandigen Zellen, die, ihrer Außenwand angeheftet, eine in einer Tasche sitzende große Calciumoxalatdruse führen (Fig. 182) und bei den dunklen Varietäten auch den in Alkali löslichen Farbstoff (in Form von Pigmentkörpern, HARTWICH) enthalten. Von der Fläche betrachtet sind sie isodiametrisch und bieten (auch im Preßkuchen) ein für den Sesamsamen außerordentlich charakteristisches Bild, denn es sind nur wenige Fälle (von BENECKE und COLLIN) beobachtet, wo diese Kristalle fehlten. An den vier Eckleisten (s. oben) des Samens sind die Epidermalpalissaden fächerartig angeordnet (Fig. 182 I). Hier fehlt ihnen auch meist die Kristalldruse. Die zweite Schicht ist die aus mehreren Reihen obliterierter dünnwandiger, kleine Prismen oder Zwillingskristalle (COLLIN, HANAUSEK) enthaltender Zellen bestehende Nährschicht. Bei den dunklen Sorten führt auch sie Farbstoff. Das Endosperm ist mehrschichtig. Seine Zellen sind etwas dickwandiger als die Zellen der bifacial gebauten breiten Cotyledonen (Fig. 182), enthalten aber wie diese in Ölplasma eingebettete, Globoide und Kristalloide führende, Aleuronkörner. Diese sind im Endosperm 2–6, in den Cotyledonen bis 10 mik. groß.

Fig. 182.

Sesamum indicum

D

L.

Querschnitt durch Samenschale (S), Endosperm (E) und einen Cotyledon (C).

[Nach

Moeller-Winton

.]

Lit. FLÜCKIGER, Z. Kenntn. d. Sesamsam. Schweiz. Wochenschr. 1865. — BENECKE, Die verschied. Sesamarten u. Sesamkuchen d. Handels. Pharm. Centralh. 1887, 545 und Anleit. zur mikrosk. Unters. d. Kraftfutterm. 1886. — BÖHMER, Die Kraftfuttermittel 1903. — MOELLER-WINTON, Mikroskop. d. Nahr.- u. Genußm. 2. Aufl. — COLLIN-PERROT, Les résid. industr. — T. F. HANAUSEK in Wiesner Rohstoffe II. Aufl. — HARZ, Landwirtsch. Samenk. — HEBEBRAND, Über d. Sesam. Landw. Vers. Stat. 1898, 45. — KOBUS, Kraftfutter u. s. Verfälsch. Landw. Jahrb. 1884, 813. — HARTWICH in Realenzyklop. d. Pharm.

Chemie. Die Samen enthalten im Mittel in Prozenten: 5,50 (5,25–6,5) Wasser, 20,30 (19,5–22,7) Rohproteïn, 14,98 stickstofffreie Extraktstoffe, 7,15 (6,4–8,4) Rohfaser, besonders Pentosane, 4,5–6,47 Asche. Ferner enthalten die Samen 47 bis 57% im Durchschnitt 50–53% (indische Saat) bzw. 56–57% (Levantiner) Öl (die indischen Pressen liefern nur 22–31% Öl), Saccharose (VALLÉE, 0,64% BOURQUELOT) und reduzierenden Zucker (0,14% BOURQUELOT), ein Pentosan (E. SCHULZE, WITTMANN), Lecithin und Cholin (im Preßkuchen, E. SCHULZE), Phytin (POSTERNAK), Conglutin, Globulin, Legumin (RITTHAUSEN), Amide, einen 1,95% Schwefel enthaltenden Proteïnstoff. Über 96% des Stickstoffes sind als Eiweißstickstoff vorhanden. Der Gehalt an Calciumoxalat beträgt 0,2–1,8%.

Das Sesamöl, Oleum Sesami (huile de sésame ou de benné, sesame oil, gingeli, gingili oder jinjili oil, til oder teel oil, benné oil, olio di sesamo), ist kalt gepreßt hellgelb, geruchlos und von angenehmem Geschmack. Die Elementarzusammensetzung des Öls der schwarzen (und weißen) Samen ist C = 76,17 (77,38), H = 11,44 (11,59), O = 12,39 (11,03) (KÖNIG). Es enthält 12,1–14,1% feste Fettsäuren (FARNSTEINER) und 78,1% flüssige (LAUE). Letztere bestehen vorwiegend aus Ölsäure, weniger aus Linolsäure, die festen aus Palmitin- und Stearinsäure, sowie etwas Myristicinsäure (KREIS). Die Menge des Unverseifbaren, das aus Phytosterin, Sesamin und Rotöl besteht, beträgt 0,95–1,32%, die freien Fettsäuren des kaltgepreßten Öls 0,47–5,75%. Das Öl dreht rechts (+0,8° bis +1,6°, UTZ) infolge seines Gehaltes an Phytosterin (F. 137, VILLAVECCHIA und FABRIS) und an durch Eisessig aus dem Öl extrahierbaren, zu 0,2–0,5% vorhandenen Sesamin [C18H18O5, Nadeln, F. 118°, TOCHER; (C11H12O3)2, F. 123°, VILLAVECCHIA und FABRIS; C33H30O10 (?), BÖMER und WINTER]. Letzteres wird durch Nitroschwefelsäure erst grün, dann hellrot, welche Reaktion die U. St. Ph. zur Identifizierung des Öls benutzt. Ferner wurde daraus ein aus einem krist. Kohlenwasserstoff (F. 91–92°) entstehendes (CANZONERI und PERCIABOSCO), dickes, stickstofffreies, rotbraunes Öl isoliert (TOCHER, VILLAVECCHIA), das die Rohrzucker-Salzsäurereaktion des Öls, die (von CAMOIN gefundene) sog. BAUDOUINsche Reaktion, bedingt und das vollständig in die flüssigen Fettsäuren übergeht, wenn diese mit der Bleisalz-Äthermethode abgeschieden werden. Da die BAUDOUINsche Reaktion auf der Bildung von Furfurol aus der vom Rohrzucker abgespaltenen Lävulose beruht, kann der Rohrzucker bei der für Sesamöl höchst charakteristischen Probe, die noch kleinste Mengen Sesamöl nachzuweisen erlaubt, durch Furfurol ersetzt werden (VILLAVECCHIA und FABRIS). Alle aromatischen Aldehyde mit zyklischem Kern geben mit Sesamöl Farbenreaktionen (BREINDL). Ferner findet sich im Sesamöl das phenolartige Sesamol (KREIS).